Биохимический анализ крови у рыб

Биохимический анализ крови у рыб thumbnail
Биохимический анализ крови у рыб

ТОП 10:

Наименование
показателей
Лосось Форель Щука Линь Лещ Карась Сазан,
Карп
Окунь Сом
Эритроциты
млн/мкл
1,3 1,2 1,4 1,8 1,7 1,6 2,6 1,5 1,4
Гемоглобин
г%
9,8 10,0 7,9 8,9 9,6 8,9 9,7 9,1 7,0
Гематокрит % 36,0 30,0 20,0 22,0 24,0 23,0 27,0 29,0 20,0
Кол-во лейкоцитов
тыс/мкл
 
32,0
 
25,5
 
37,7
 
52,0
 
49,0
 
51,0
 
43,0
 
40,0
 
38,0

Таблица 2

Лейкограмма прудовых рыб

Виды клеток Л е й к о г р а м м а (%)
Наименование
показателей
Лосось Форель Щука Линь Лещ Карась Сазан,
Карп
Окунь Сом
Эозинофилы
Нейтрофилы 12,0 18,0 9,0 4,0 18,0 15,0 6,0 9,0 11,0
Полиморфноя-дерные 15,0 2,0 4,0 1,0 2,0 6,0 3,0 4,0 2,0
Лимфоциты 71,0 64,0 84,0 93,0 77,0 76,0 88,0 85,0 76,0
Моноциты 2,0 16,0 3,0 2,0 3,0 3,0 3,0 2,0 1,0

Биохимический метод

При биохимическом исследовании определяют такие показатели крови рыб как: уровень глюкозы, кальция, фосфора, общего белка, билирубина, ЩФ, ЛДГ, АлАт, АсАт и др.

Иммунологический метод

Позволяет определять в сыворотке крови фракции белков: альбуминов, α, β, γ-глобулинов, иммуноглобулинов и т.д.

Серологический метод

Позволяет в сыворотке крови рыб выявить специфические антитела, либо антиген и установить напряженность иммунитета к возбудителям заразных болезней.

В ихтиопатологии применяют прямые (РА – реакция агглютинации, РП – реакция преципитации) и непрямые (РН – реакция нейтрализации, РИГА – реакция иммунной гемагглютинации, РПГ – реакция пассивной гемагглютинации, ОФР – опсорно-фагоцитарная реакция, РНИФ – реакция непрямой иммунофлуоресценции) серологические реакции.

Способы взятия крови у рыб

Кровь для исследования у рыб берется из сердца, хвостовой артерии, культи хвоста или жаберных вен. Выбор способа взятия крови зависит от размера рыбы и объема, необходимого для анализа.

Взятие крови проводят, предварительно сняв чешую, удалив слизь и, обработав кожу 70 %-м спиртом.

1. При взятии крови из сердца, место укола находится в середине отрезка, соединяющего основание грудных плавников (у форели) и чуть выше этой точки – у карповых рыб. Иглу вводят в место укола, под углом 45°, относительно фронтальной плоскости.

2. При взятии крови из хвостовой артерии место укола находится в точке, образованной при условном пересечении средней линии и линии, идущей перпендикулярно от анального отверстия у сеголетков, и от заднего края анального плавника – у карповых рыб старшего возраста.

3. При взятии крови из культи хвоста, срезают спинной и анальный плавники, удаляют чешую, слизь, протирают кожу спиртом, затем отсекают хвостовой стебель по медиальной линии позади анального плавника и собирают кровь в стерильную посуду.

4. Взятие крови возможно из жаберных вен. Предварительно удаляют жаберную крышку и вводят инъекционную иглу в вену, у основания одной из жаберных дуг.

Из полученной крови сразу же готовят тонкие мазки, которые окрашивают по Паппенгейму. Для этого высушенные мазки погружают в кювету с раствором Май-Грюнвальда (0,3–0,5 г эозинметиленового синего + 100 мл метилового спирта) на 5 минут, затем промывают дистиллированной водой (рН = 6,81) в течение 2-х минут и докрашивают в растворе Романовского 25–30 минут. Окрашенные мазки промывают водопроводной водой и высушивают на воздухе. В каждом мазке подсчитывают 100 клеток и выводят лейкограмму.

Специальные лабораторные методы исследований:

1. Паразитологический

2. Микологический

3. Микробиологический

4. Вирусологический

5. Биологическая проба.

Паразитологическое исследование

Это последовательное вскрытие органов и тканей с целью обнаружения паразитов. Для исследования берется не менее 15 живых или только что уснувших рыб каждого вида и возраста и не менее 25-ти экземпляров личинок рыб.

Для обнаружения паразитов используют компрессионный способ, когда ткань или орган помещают между стеклами, сдавливают до прозрачности, а потом исследуют под микроскопом. Для определения интенсивности инвазии гельминтов и ракообразных учитывают в абсолютных величинах, а простейших – в 25-ти полях зрения микроскопа (7 х 10, 7 х 40 в зависимости от величины паразита).

Порядок проведения работы следующий:

1. Осмотр рыбы (крустацеозы, бделлозы, постодиплостомоз, филометроидоз). Соскоб скальпелем слизи с поверхности тела и исследование ее под микроскопом в капле воды или изотонического раствора натрия хлорида под покровным стеклом (простейшие).

2. Берут кровь из сердца или хвостовой артерии и готовят мазок, который фиксируют 5 минут в метиловом спирте и окрашивают по методу Романовского.

Сразу, после взятия крови, вскрывают полость сердца, выпускают кровь на стекло и под микроскопом исследуют на наличие сангвиникол.

3. Микроскопируют плавники (простейшие, моногенеи, рачки).

Читайте также:  Где сдать анализ крови на геном

4. Исследуют жабры. Удаляют жаберные крышки, с двух сторон отсекают жаберные дуги и исследуют их на наличие крупных паразитов, затем делают соскоб и просматривают его под малым и большим увеличении. Скальпелем отделяют жаберные лепестки от дуг и компрессионным способом просматривают под микроскопом (простейшие, моногенеи, личинки трематод, цисты микроспоридий).

5. Проводят исследование глаз. Отделяют глазное яблоко, извлекают хрусталик. Компрессионным способом исследуют под микроскопом (диплостомоз, миксоспоридии).

6. Вскрывают полость тела, осматривают и извлекают внутренние органы: кишечник и, связанные с ним, органы (печень, желчный пузырь, селезенку), кишечник отсекают у ротовой полости и анального отверстия; гонады, плавательный пузырь, почки, мочевой пузырь. Отпрепарированные органы помещают в бактериологические чашки, следя за тем, чтобы они не соприкасались друг с другом и были постоянно влажными.

Осматривают брюшную полость (личинки цестод, нематод, трематод). Затем исследуют желчный и мочевой пузыри, их разрезают и изучают содержимое под микроскопом (амебоиды, миксоспоридии, трематоды, инфузории). Исследуют печень, селезенку, гонады, почки, жировую ткань. Небольшой кусочек от каждого органа исследуют под микроскопом под микроскопом на наличие спор миксоспоридий. Затем компрессионным способом под МБС (трематоды, цестоды, нематоды).

Кишечник разделяют на небольшие части и каждую разрезают вдоль, производя осмотр содержимого (микро- и макроосмотр). Затем под микроскопом исследуют соскоб со слизистой оболочки кишечника и компрессионно изучают кишечник (простейшие, трематоды, цестоды, нематоды).

Плавательный пузырь осматривают внешне, а затем делают соскоб и компрессионно исследуют под микроскопом.

Мускулатуру освобождают от кожи, делают через 0,5 мм поперечные разрезы, визуально осматривают, раздвигая их препаровальной иглой. Компрессионно исследуют 1 см мускулатуры, (цестоды, нематоды, трематоды).

Микологическое исследование

Для микологического исследования берут пробы от только что погибших или живых рыб. В замороженном виде их можно хранить до 3-х суток, а в консерванте до 2-х суток.

Подтверждение или исключение микозной природы болезни осуществляется с помощью следующих методов:

микроскопическое исследование – наиболее важный метод обнаружения и исследования грибов, позволяющий установить наличие гриба, его локализацию, а иногда и вид;

гистологическое исследование – метод исследования пораженной ткани при микозах, является основным методом диагностики, так как многие грибы невозможно культивировать на искусственных питательных средах;

постановка биопробы.

Культивирование грибов позволяет изучить морфологию колоний, типичные формы спороношения, сохранить культуры и получить заразный агент для биопробы.

Бактериологическое исследование

Исследование основано на бактериоскопическом и серологическом методах исследования.

Бактериоскопический метод исследования позволяет обнаружить в патматериале бактерии и ориентировочно диагностировать заболевание (микобактериоз, вибриоз). Бактериологический метод исследования имеет наиболее важное значение, так как позволяет получить чистую культуру микробов, изучить их морфо-культуральные свойства, биохимические свойства, определить вирулентность и чувствительность к антибиотикам, что особенно важно при выборе лечебных препаратов.

Серологический метод применяют при иммунологических исследованиях: дополнительном типировании возбудителя, выявлении специфических антител в сыворотке крови больных рыб.



Источник

Тесная функциональная взаимосвязь крови с жизнедеятельностью организма позволяет выявить в ней изменения, связанные с сезоном года и уровнем обменных процессов в различные периоды жизни рыб, состоянием организма во время болезни, нарушений в кормлении, ухудшений условий выращивания, стрессов и других, влияющих на рыбу факторов абиотического, биотического и антропогенного характера. В связи с этим, анализ крови является одним из надежных и оперативных методов при контроле за физиологическим состоянием гидробионтов.
В настоящее время в ихтиогематологии для оценки физиологического состояния организма принято определять следующие основные показатели:
— содержание гемоглобина,
—  гематокритная величина,
— количество эритроцитов,
— содержание гемоглобина в одном эритроците,
— средний объем эритроцитов,
— скорость оседания эритроцитов,
— количество лейкоцитов,
— лейкоцитарную формулу,
— содержание сахара (глюкозы) в крови,
— содержание общего белка в сыворотке крови и некоторые другие показатели.
Первые шесть показателей характеризуют эритроцитарную картину так называемую красную кровь. Определение количества лейкоцитов и лейкоцитарная формула позволяют оценить изменения в «белой крови». Последние два показателя (содержание сахара (глюкозы) в крови и общего белка в сыворотке) дают представление о биохимическом обмене, протекающем в организме.[node:title]Размеры и количество эритроцитов в крови находятся в тесной зависимости от активности рыбы и условий её обитания. Виды, ведущие пелагический образ жизни и совершающие большие кормовые и нерестовые миграции, содержат в среднем в 1 мкл крови от 1,5 до 2,5 млн. эритроцитов (сельдь, форель). У ската с малоподвижным придонным образом жизни количество этих клеток не превышает 150 тыс./мкл, у карпа – обита

теля небольших водоемов-прудов колеблется от 1,2 до 2 млн./мкл, а у донных осетровых видов находится в пределах 980-1000 тыс./мкл. Эритроциты являются носителями дыхательного пигмента —  гемоглобина. Главная их функция –

Читайте также:  Анализы крови при лейкозе у собаки

 дыхательная, а также они активно регулируют кислотно-щелочное равновесии, адсорбируют токсины и антитела и принимают участие в ряде ферментативных процессов.

Центральное место в гематологических исследованиях занимает гемоглобин. Основная функция этого белка крови – транспортная, т.е. доставка кислорода к тканям с дыхательной поверхности и удаление углекислого газа во внешнюю среду. Кроме того, гемоглобин играет важную роль  в регуляции кислотно-щелочного равновесия и участвует в поддержании коллоидно-осмотического давления крови. Количество гемоглобина в организме рыб имеет важное диагностическое значение. Снижение этого показателя отмечается при голодании (например, в конце зимовки), анемиях различной природы (алиментарной, или вызванной большой кровопотерей в  результате механического воздействия), заболеваниях, хронических токсикозах  и ухудшении условий содержания (снижения кислорода, загрязненность воды и т.д.).                                                                                                               

[node:title]

Фото. Фотоэлектроколориметр – прибор для определения

оптической плотности растворов при измерении

уровня гемоглобина цианметгемоглобиновый метод

Одним из информативных биохимических показателей крови является содержание глюкозы (сахара). Глюкоза, всасываясь в кишечнике, поступает в кровяное русло, оттуда в печень, где частично откладывается в виде гликогена, частично же переходит опять в кровь и потребляется тканями. Ее содержание в крови рыб поддерживается на постоянном уровне при помощи ряда специальных физиологических механизмов. Уровень глюкозы можно рассматривать как индикатор стресс-реакции рыб. Гипергликемия (повышение содержания сахара в крови) отмечается при хендлинге (рыбоводных манипуляциях с рыбой), испуге, температурном шоке, транспортировке и т.д. Количество сахара в крови изменяется под воздействием нарушения углеводного обмена, что у рыб может быть связано с питанием несбалансированными или высокоуглеводистыми кормами.   При хранении образцов крови концентрация глюкозы снижается вследствие гликолиза, поэтому анализ крови проводят в день взятия.

Определение глюкозы в крови проводят экспресс-методом с помощью диагностических тест полосок — глюкостиксов.

[node:title]

Фото. Глюкометр

Использование современных приборных методов определения показателей крови позволяет оценить физиологическое состояние рыбы оперативно и быстро.

Продолжение публикаций материала будет 23.10.2019 г.

Источники:
Головина Н.А., Романова Н.Н. Лабораторный практикум по физиологии рыб: Учебное пособие. – СПб.: Издательство «Лань», 2019. – 136 с.
Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб / Н.Т. Иванова. – М.: Легкая и пищевая пром-ть, 1983. – 184 с.
Иванова Н.Т. Некоторые аспекты к основам ихтиогематологии / Н.Т. Иванова. – Ростов н/Д: из-во РГПУ, 2002. – 54 с.
Методические указания по проведению гематологического обследования рыб // Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. Часть 2. М.: отдел маркетинга АМБ-агро, 1999. – С. 69-97.

Подготовила: Н.Н. Романова, зав. лабораторией ихтиопатологии, к.б.н., доцент Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»)

Источник

  • Авторы
  • Файлы

Овчинникова С.И., Похольченко Л.А., Михнюк О.В., Широкая Т.А., Кривенко О.Г., Ключко Е.В., Тимакова Л.И.

Актуальной задачей современной экологической биохимии гидробионтов является поиск и анализ биохимических механизмов, которые обеспечивают нормальное существование и адаптационные возможности гидробионтов, в частности рыб, в условиях антропогенного стресса.

Усиление негативной антропогенной нагрузки на водные экосистемы снижает их биологическую продуктивность. Культивирование промысловых гидробионтов является одним из перспективных и быстроразвивающихся современных направлений рыбного хозяйства, которые позволяют решить проблему восстановления и сохранения водных биоресурсов.

На кафедре биохимии биологического факультета МГТУ проводятся комплексные систематизированные биохимические исследования рыб семейства Лососевых, диких и выращенных в условиях искусственного воспроизводства. Объектами исследования являются такие ценные рыбы как форель радужная и лосось атлантический.

Форель пресноводная разводится в садках на реке Тулома, форель морская — в садках форелевых ферм на Белом море. Анализируется также заводская молодь семги от производителей атлантического лосося (река Умба, река Кола) и акселерированная молодь атлантического лосося морского садкового хозяйства в губе Печенга на Баренцевом море, выращенная индустриальным способом из норвежской икры.

Проводится комплекс морфологических исследований, включающий определение размерных характеристик, массового состава исследуемых рыб. Изучается влияние такого важного фактора, как соленость морской воды на размерно-массовые характеристики рыб семейства Лососевых, выращенных в условиях искусственного воспроизводства.

Анализируются химические показатели и биохимические свойства данных гидробионтов на разных стадиях жизненного цикла. Изучается динамика содержания воды, общего азота, белкового азота, аминного азота, водорастворимой белковой фракции, липидов, макроэргических соединений, минеральных веществ в тканях гидробионтов. Исследуется активность тканевых протеолитических ферментов, химические показатели качества тканевых жиров. Особое внимание уделяется такому показателю, как каротиноиды. Каротиноиды — естественные антиоксиданты в тканях лососевых рыб, играющие активную роль в биохимической адаптации организмов гидробионтов к условиям обитания. Для определения содержания каротиноидов используется спектрофотометрический метод.

Читайте также:  Сколько готовится анализ крови на брюшной тиф

Проводится сравнительный биохимический анализ пресноводной и морской форели, а также сравнительные исследования биохимического статуса лосося атлантического (молоди), выращенного в условиях искусственного воспроизводства и дикой молоди. Актуальным направлением является изучение влияния низких температур на особенности химического состава тканей радужной форели, морской и пресноводной, лосося атлантического (молоди).

Эколого-биохимические исследования рыб на молекулярном уровне, несомненно, актуальны. Многофакторный анализ изменений биохимических параметров при воздействии антропогенного стресса является необходимым условием для создания комплексной системы мониторинга и тестирования водных экосистем Северного бассейна.

Полученные результаты могут быть использованы в практических целях при разработке рекомендаций для специалистов, занимающихся проблемами культивирования рыб семейства Лососевых, для решения вопросов воспроизводства ценных видов рыб в условиях возможного уменьшения промысловых биоресурсов.

Библиографическая ссылка

Овчинникова С.И., Похольченко Л.А., Михнюк О.В., Широкая Т.А., Кривенко О.Г., Ключко Е.В., Тимакова Л.И. ЭКОЛОГО-БИОХИМИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ РЫБ СЕМЕЙСТВА ЛОСОСЕВЫХ, ВЫРАЩЕННЫХ В УСЛОВИЯХ ИСКУССТВЕННОГО ВОСПРОИЗВОДСТВА // Фундаментальные исследования. – 2005. – № 1. – С. 38-39;
URL: https://fundamental-research.ru/ru/article/view?id=5615 (дата обращения: 24.03.2020).

Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»

(Высокий импакт-фактор РИНЦ, тематика журналов охватывает все научные направления)

Источник

Фтор есть почти во всех продуктах питания, которые мы употребляем. В тех областях, где вода имеет повышенный уровень фтора от природы, в организм может попадать лишняя доза этого микроэлемента. Данное состояние имеет свое название — флюорозом. Этот микроэлемент имеет способность накапливаться как в зубах, так в костях.

Сроки выполнения5-6 дней 
  
Синонимы (rus)Анализ крови на фтор, анализ крови на микроэлементы
  
Методы ВЭЖХ-МС
  
Единицы измеренияМг/кг
  
Подготовка к исследованию Анализ лучше проводит утром натощак. Для сдачи крови, лучше пить больше воды. 
Не употреблять алкоголь за 24 часа до начала исследования.
  В течение трех часов до исследования, нельзя мочиться.
  
Тип биоматериала и способы его взятияСыворотка крови, полученная из венозной крови

Фтор — сложный микроэлемент в организме. Недостаток и даже избыток, одинаково опасны для состояния здоровья в целого организма. Также фтор — важный микроэлементом в строении костей и костной ткани.

1-1,5 мг на 1 литр воды — нормальная доза фтора для взрослого (здорового) человека. Данные предоставлены  в л/воды, так как этот микроэлемент легко растворимым в жидкостях. На данный момент сложно говорить о таких патологиях, как недостаток фтора, так как он есть практически во всех продуктах питания, употребляемых нами. Так что человек даже не знает о том, что употребляет фтор ежедневно.

Что вызывает избыток фтора в организме?

Один из самых распространенных эффектов от недостатка фтора — развитие кариеса или других заболеваний связанных с зубами. При избытке фтора, начинаются другие проблемы с зубами: изменение формы и цвета. Также может развиваться остеохондроз, образование костных наростов и тугоподвижность суставов. А контакт с фтором может вызвать заболевания кожи — зуд, шелушение,  раздражение, а также увеличение риска появления рака.

Малоизвестный факт: фтор есть в черном чае. На сегодняшний день еще не было доказано, что чай вызывает избыток фтора в организме. Однако, если вы сильно любите его и употребляете по несколько литров в день, рано или поздно это может вызвать развитие флюороза скелета.

Диагностика крови на фтор

Уровень фтора в организме человека можно определить через анализ крови  по сыворотки крови.  На анализ желательно приходить до 10:00.

Когда обращаться к врачу?

  • При потемнении зубов, не сопровождающиеся болезненными ощущениями;
  • При появлении на эмали зубов беловатых  пятен иногда приобретают коричневый отттенок;

Фтор присутствует во многих зубных пастах. Его содержание не токсичное и не может вызвать никаких изменений в организме. Но если Вы живете в районе где содержание фтора в воде превышает установленные нормы (более 0,5 мг/л), то пользоваться такими пастами не стоит, так как это может привести к флюорозу, разрушению эмали зубов.

Лечение при избытке фтора

При диагностике избытка фтора, рекомендуют использовать питьевую воду, которая не содержит или содержит определенное количество фтора. Можно установить мембранные фильтры, которые способны задерживать фтор.   При окрашивании зубов в другой цвет, проводятся специальные химические процедуры по отбеливанию зубов. В некоторых случаях могут назначать глицерофосфаты, глюконат кальция.

Источник: analizy-Sochi.ru

Источник