Забор крови на общий анализ техника выполнения

Забор крови на общий анализ техника выполнения thumbnail

1.
Клиническая трактовка результатов
общего анализа крови (см. ход занятия,
п.2-5).

2.
Проведение макроскопического,
микроскопического, бактериоскопического
и бактериологического исследования
мокроты (см. ход занятия, п.7).

3.
Проведение макроскопического,
физико-химического и бактериологического
исследования плевральной жидкости (см.
ход занятия, п.9).

4.
Клиническая оценка результатов
лабораторного анализа мокроты и
плевральной жидкости (см. ход занятия,
п.7,9).

5. Ход занятия.

В
ходе занятия обсуждаются контрольные
вопросы согласно темы занятия и
отрабатываются практические навыки
(п.4.).

1. Техника взятия крови для общего клинического анализа.

Взятие
крови для общего клинического анализа
крови производят путем укола в мякоть
IV
пальца левой руки или мочку уха. Для
укола палец обрабатывают ватным шариком,
смоченным раствором антисептика, чаще
всего септоцида. Укол лучше производить
сбоку, где более густая капиллярная
сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от
толщины кожи. Кровь из ранки должна
вытекать свободно, так как при сильном
надавливании на палец возможно
примешивание тканевой жидкости,
приводящее к искажению результатов.

Не
рекомендуется брать кровь сразу после
физической и умственной нагрузки, приема
медикаментов, физиотерапевтических
процедур, диагностических манипуляций.
Необходимо производить забор крови
натощак. Повторные исследования
желательно проводить в одни и те же
часы, поскольку морфологический состав
крови подвержен колебаниям на протяжении
суток.

Для
исследования гемограммы используют
пробирочный метод взятия крови. Точная
дозировка крови и разводящих жидкостей
достигается с помощью калиброванных
пипеток и дозаторов.

Общий клинический
анализ крови включает определение
следующих компонентов:

1)
количество гемоглобина;

2)
количество эритроцитов;

3)
индексы красной крови (цветовой показатель
и среднее содержание гемоглобина в
одном эритроците);

4)
скорость оседания эритроцитов (СОЭ);

5)
гематокритное число;

6)
осмотическая резистентность эритроцитов
и их диаметр;

7)
количество ретикулоцитов;

8)
количество лейкоцитов и лейкоцитарная
формула;

9)
количество тромбоцитов.

2.
Методика
определения концентрации гемоглобина,
количества эритроцитов и ретикулоцитов.
Расчет индексов красной крови: цветовой
показатель и среднее содержание
гемоглобина в одном эритроците.
Диагностическое значение. Гематокритное
число.

Предложено
много методов определения концентрации
гемоглобина. Важнейшие из этих методов
– колориметрические. Чаще колориметрируют
цветные производные гемоглобина: хлорид
гематина, цианметгемоглобин,
карбоксигемоглобин и др. Концентрацию
гемоглобина измеряют фотоэлектроколориметрами,
приборами ГФ-2 и ГФ-3, гемоглобинометрами
при автоанализаторах.

Унифицированным
является цианметгемоглобиновый
фотометрический метод. Он основан на
превращении гемоглобина в цианметгемоглобин
при добавлении к крови реактива (раствора
Драбкина), содержащего железосинеродистый
калий и цианид калия. Концентрацию
цианметгемоглобина измеряют фотометрически,
а расчет количества гемоглобина
производят по калибровочному графику.

Гематиновый
метод Сали основан на превращении
гемоглобина при добавлении к крови
хлористоводородной кислоты в хлорид
гематина (хлоргемин) коричневого цвета,
интенсивность окраски которого
пропорциональна содержанию гемоглобина.
В настоящее время этот метод не имеет
широкого применения.

В
норме концентрации гемоглобина
составляет:


у женщин 120 — 150 г/л;


у мужчин 130—
160 г/л
.

Увеличение
концентрации гемоглобина наблюдается
у людей, живущих в условиях высокогорья,
при обезвоживании у работников горячих
цехов, после обильной рвоты и при диарее,
при массивных ожогах, при эритремии и
др.

Уменьшение
концентрации гемоглобина наблюдается
при анемиях, а так же при обильном
употреблении жидкости, гемодилюции
лекарственными инфузионными средствами
и др.

Определение
количества эритроцитов крови выполняется
следующими методами:

  1. Подсчет
    эритроцитов в счетной камере с сеткой
    Горяева.

Принцип
метода:
в
строго определенном объеме каме­ры
подсчитывают под микроскопом клеточные
элементы, а затем производят перерасчет
полученного результата на 1 мкл крови.
С целью уменьшения количества клеток,
подлежащих подсчету, кровь предварительно
разводят в смесителях или пробирках.

Оборудование и
реактивы:

  1. смесители
    (меланжеры) или пробирки для разведе­ния
    крови;

  2. 3
    % раствор хлорида натрия или жидкость
    Гайема для разведения эритроцитов
    (ртути хлорид — 0,5 г; натрия сульфат — 5,0
    г; натрия хлорид — 1,0 г; вода дистиллиро­ванная
    — до 200 мл);

  1. счетная
    камера Горяева;

  1. микроскоп.

Смесители
представляют собой капиллярную пипетку
с резервуаром, содержащим бусинку,
способствующую смешиванию крови с
жидкостью для разведения. На сме­сителе
нанесены метки: одна — 0,5, другая — перед
входом в резервуар — 1,0, третья — у выхода
из ампулы — 101. При набирании крови в
пипетку до метки 0,5 она будет разве­дена
в 200 раз, до 1,0 — в 100 раз.

Счетная
камера представляет собой стеклянную
плас­тинку с выгравированной или
наклеенной сеткой Горяе­ва. Обычно
на одной пластинке имеются две сетки,
разде­ленные между собой глубокой
канавкой, что позволяет ис­пользовать
одну сетку для подсчета эритроцитов, а
другую — для подсчета лейкоцитов. По
краям сеток находятся воз­вышения, к
ним притираются покровные стекла,
которые образуют верхнюю границу камеры.
Притирать покров­ные стекла нужно
очень плотно до появления радужных
колец (так называемых колец Ньютона),
ибо только в этом случае будут соблюдены
необходимые высота (1/10 мм) и объем счетной
камеры. Сетка Горяева имеет 225 больших
квадратов (15 х15), 25 из которых раз­делены
на малые, по 16 в каждом. Каждая сторона
малого квадрата равна 1/20 мм, а так как
высота камеры состав­ляет 0,1 мм, то
объем счетной камеры, ограниченной
од­ним малым квадратом, будет равен
1/4000 мм3.

Ход
исследования:
в
сухую чистую пробирку или сме­ситель
отмеривают раствор хлорида натрия или
жидкость Гайема. Пипеткой от гемометра
Сали набирают кровь из пальца, вытирают
кончик пипетки марлей или фильтро­вальной
бумагой, выдувают кровь на дно пробирки
с жидкостью для разведения. Подготавливают
камеру Горяева. Затем концом круглой
стеклянной палочки или пастеровской
пипеткой наносят каплю разведенной
кро­ви на среднюю пластинку камеры у
края покровного стекла.

Читайте также:  Анализ крови гранулоциты понижены лимфоциты повышены

Интерпретация
полученных данных.
Подсчет
эрит­роцитов производят спустя 1-2 мин
после заполнения ка­меры (когда
эритроциты осядут на дно камеры) при
малом увеличении микроскопа (объектив
8х, окуляр — 10х или 15х) и при затемненном
поле зрения (при опущенном кон­денсоре
или прикрытой диафрагме). Считать
эритроциты необходимо в 5 больших
квадратах, т. е. в 80 маленьких, расположенных
по диагонали. Подсчету подлежат все
эритроциты, лежащие внутри малого
квадрата, и те, кото­рые находятся на
левой и верхней линиях. Эритроциты,
расположенные на правой и нижней линиях,
не считают, так как они будут учтены в
следующем квадрате.

Количество
эритроцитов в 1 мкл (мм3)
крови высчиты­вают по следующей
формуле:

Х=(А х 4000 х В)/Б,

где
X
— количество форменных элементов в 1 мкл
крови; А — количество
форменных элементов, сосчитанных в
опреде­ленном количестве малых
квадратов (для эритроцитов — в 80); Б —
количество сосчитанных малых квадратов
(80); В — степень разведения крови (для
подсчета эритроцитов -100 или 200); 4000 —
величина, умножая на которую, мы получаем
количество клеток в 1 мкл (1 мм3),
так как объ­ем 1 маленького квадрата
равен 1/4000 мм.

Для
перевода в систему СИ (пересчет на 1 л
крови) по­лученную цифру умножают на
106
(или количество целых единиц умножают
на 1012).

Методика
подсчета эритроцитов в счетной камере
дос­таточно точна (ошибка может
достигать 2,5 %), но весьма трудоемка.
Ошибки могут быть обусловлены:
образовани­ем сгустка, недостаточным
количеством подсчитанных квадратов,
несоблюдением условий, обеспечивающих
правильную высоту счетной камеры
(притирание покров­ных стекол без
образования радужных колец), неравно­мерным
заполнением камеры (образование пузырьков
воздуха), подсчетом эритроцитов без
выжидания 1-2 мин (эритроциты не успевают
осесть и результат оказывается
заниженным), плохо вымытыми смесителем
и счетной ка­мерой, недостаточной
квалификацией лаборанта, выпол­няющего
исследование.

  1. Фотометрический
    метод подсчета количества эритроцитов
    – основан на фотометрическом измерении
    степени погашения света определенных
    длин волн взвесью эритроцитов. Процент
    задержанного света прямо пропорционален
    числу эритроцитов. Для этого используют
    приборы типа эритрогемометров и
    электрофотоколориметры.

  2. Электронно-автоматический
    метод. Используются приборы автоматического
    счета частиц крови, работающие по
    импульсному и сцинтиляционному принципу
    (счетчики «Целлоскоп» и «Культер»,
    автоанализаторы «Техникон»).

Нормальное
количество эритроцитов:


у женщин 3.7 – 4.7 х 1012/л;


у мужчин 3,9
— 5,1 х
1012/л.

Увеличение
количества эритроцитов наблюдается:

1)
при эритремии (абсолютный первичный
эритроцитоз);

2)
при гипоксии: обструктивная вентиляционная
недостаточность, при наличии
альвеолярно-капиллярного блока –
фиброзирующий альвеолит и легочные
васкулиты, врожденные пороки сердца с
шунтом справа налево и др;

3)
при гемоглобинопатиях (наследственные
заболевания, характеризующиеся наличием
в эритроцитах аномальных гемоглобинов);

4)
при вторичных абсолютных эритроцитозах,
связанных с повышенной продукцией
эритропоэтинов (рак почек, гидронефроз
и поликистоз почек, рак печени и др.);

5)
при вторичных абсолютных эритроцитозах,
связанных с избытком адренокортикостероидов
или андрогенов (феохромоцитома, синдром
/ болезнь Иценко-Кушинга, гиперальдостеронизм);

6)
при относительных эритроцитозах
вследствие обезвоживания, стрессов,
алкоголизма, повышенной физической
нагрузки, проживания в условиях
высокогорья и др.

Уменьшение
количества эритроцитов характерно для
анемий различного происхождения. От
истинной анемии, характеризующейся
абсолютным уменьшением эритроцитарной
массы, нужно отличать анемию
(эритроцитопению) вследствие гидремии
(снижение гематокрита из-за увеличения
объема плазмы).

Уменьшение
количества эритроцитов (анемия,
эритроцитопения) наблюдается при
постгеморрагических анемиях, анемиях
вследствие недостаточного кровеобразования
(железодефицитная, витамин-В12- и
фолиеводефицитная), анемиях в результате
усиленного распада эритроцитов
(гемолитические), железоперераспределительных
и метапластических (при опухолевых
заболеваниях крови) анемиях и др.

Расчет
индексов красной крови: цветовой
показатель и среднее содержание
гемоглобина в одном эритроците.

Под
индексами красной крови понимают среднее
содержание гемоглобина в одном эритроците
и цветовой показатель.

Определение
среднего содержания гемоглобина в одном
эритроците производят делением
концентрации гемоглобина на число
эритроцитов в одинаковом объеме крови.
В норме 1 эритроцит содержит 33 пг
гемоглобина (допустимые колебания
27-33.4 пг).

Величину
33 пг условно принимают за единицу (норма
содержания гемоглобина в одном эритроците)
и обозначают как цветовой показатель.

Цветовой показатель
отражает насыщение эритроцита
гемоглобином.

Вычисление
цветового показателя (ЦП) производят
по формуле:

ГЕМОГЛОБИН
(в г/л) х 3

ЦП =
——————————————————————-;

три первые цифры
числа эритроцитов (в миллионах)

ГЕМОГЛОБИН (в г/%)

ЦП =
——————————————————————-;

две первые цифры
числа эритроцитов (в миллионах)

ГЕМОГЛОБИН (в условных единицах)

ЦП =
——————————————————————-

две первые цифры
числа эритроцитов (в миллионах)

В
норме цветовой показатель равен 0,85 –
1,05.

Индексы
красной крови важны для суждения о
нормо-, гипер-, гипохромии эритроцитов.

Гиперхромия
– увеличение среднего содержания
гемоглобина в 1 эритроците, дающее
цветовой показатель выше 1.05, зависит
исключительно от увеличения объема
эритроцитов, а не от повышенного насыщения
их гемоглобином, так как нормальный
эритроцит насыщен гемоглобином до
предела. Гиперхромия характерна для
мегалобластных анемий, обусловленных
дефицитом витамина В12
и фолиевой кислоты.

Гипохромия
– уменьшение среднего содержания
гемоглобина в 1 эритроците, дающее ЦП
ниже 0.85, может быть так же следствием
уменьшения объема эритроцитов. Гипохромия
служит истинным показателем или дефицита
железа в организме, или железорефрактерности.
Гипохромия наблюдается при хронических
кровопотерях, железодефицитных и
железорефрактерных анемиях, свинцовой
интоксикации и др.

Нормохромия
– это нормальное содержание гемоглобина
в эритроците (ЦП -0,85-1,05). Нормохромные
анемии развиваются при равномерном
уменьшении содержания эритроцитов и
количества гемоглобина и наблюдается
в случаях острых кровопотерь, при
гипопластической анемии, при гемолизе,
сепсисе.

Гематокрит
(гематокритное число) – дает представление
о соотношении между объемом плазмы и
объемом форменных элементов крови.
Определяется с помощью следующих
методов.

  1. Метод
    центрифугирования в гематокритной
    трубке.

  2. Электронно-автоматический
    метод (с помощью аппаратов «Целлоскоп»
    и «Культер»).

Читайте также:  Норм показатели общего анализа крови у детей

Нормальные величины
гематокрита:

— у женщин 36-42%;

— у мужчин 40-48%.

Гематокритное
число учитывается при диагностике
полицитемических и олигоцитемических
состояний.

Ретикулоциты
– это молодые эритроциты, содержащие
базофильную субстанцию в виде сеточки,
представленную агрегированными
рибосомами и митохондриями. Сеточка
обнаруживается при прижизненной окраске
мазков крови 1% раствором бриллианткрезил
синего. Подсчет производится под
иммерсионным объективом по отношению
к 1000 эритроцитов.

В
норме содержание ретикулоцитов в
периферической крови составляет 2-10º/○○
(0,2-1,2%). Ретикулоцитоз отображает степень
регенераторной способности костного
мозга. При гемолизе, кровопотерях
эритропоэз в нормальном костном мозге
активизируется, и число ретикулоцитов
в нем и в периферической крови возрастает.
Отсутствие роста числа ретикулоцитов
в выше указанных ситуациях свидетельствуют
о пониженной функции костного мозга.

Ретикулоцитоз
при отсутствии анемии говорит о скрытых,
но хорошо компенсированных потерях
крови. Высокий ретикулоцитоз наблюдается
при адекватном лечении витамин-В12-дефицитной
анемии.

Источник

Цель:
диагностическая.

Показания:
обследование по назначению врача.

Противопоказания:
нет.

Оснащение:
стерильный лоток, накрытый стерильной
бязевой салфеткой,

стерильные
шарики, стерильный пинцет, стерильные
шприцы и игла, 70о
спирт, жгут, клеенчатый валик, салфетка
(подложить под жгут, стерильные перчатки,
маска, чистые пробирки (для бак.
обследования крови и на ВИЧ — стерильные),
штатив для пробирок, направления,
стеклограф, ёмкости с дез. растворами,
стерильный халат, резиновые пробочки
для пробирок.

Перед
забором крови проверить укомплектованность
«Аварийной аптечки»!

Алгоритм манипуляции

Последовательность
действий

Обоснование

1.
Подготовка к манипуляции.

1.Приготовить
все необходимое для проведения
процедуры (заполнить направление,
пронумеровать пробирку, сделать запись
в журнале).

Эффективность
проведения манипуляции.

2.
Установить
доброжелательное отношение с пациентом.

Гуманное
отношение к па­циенту (ст.3.Этического
кодекса м/с). Соблюдение прав пациента.

3.
Объяснить
пациенту цель и ход исследования и
получить его согласие.

Гуманное
отношение к па­циенту (ст.3.Этического
кодекса м/с). Соблюдение прав пациента

4.
При
необходимости проинструктировать
пациента о ходе манипуляции или
обеспечить пациента памяткой по
подготовке к процедуре.

Эффективность
проведения манипуляции.

5.
Помочь
пациенту принять удобное положение
для проведения венепункции.

Эффективность
проведения манипуляции.

6.

Обработать руки гигиеническим способом,
надеть спец. одежду и стерильные
перчатки.

Эффективность
проведения манипуляции. Инфекционная
безопасность.

7.
Подготовить
шприц с иглой для забора крови

(см.
мани­пуляции)

Инфекционная
безопасность.

2.
Выполнение
процедуры.

1.
Освободить
место для инъекции (место локтевой
вены).

Правильность
выполнения манипуляции.

2.
Под
локоть пациента подложить клеёнчатый
валик.

Правильность
выполнения манипуляции.

3.
Наложить
жгут на плечо пациента на 5 см выше
локте­вого сгиба, покрытое салфеткой
(или его одеждой).

Примечание:при
наложении жгута пульс на лучевой
артерии не должен изменяться. Кожные
покровы ниже места наложения жгута
багровеют, вена набухает. При ухудшении
наполнения пульса жгут необходимо
ослабить.

Лучший
доступ к вене.

4.
Попросить
пациента поработать кулачком

(сжать-расжать).

Контроль
правильности наложения жгута. Для
лучшего наполнения
вены.

5.
Обработать
перчатки шариками со спиртом.

Инфекционная
безопасность.

6.
Обработать
место инъекции шариком со спиртом от
периферии к центру (снизу-вверх),
диаметром 10х10 см.

Инфекционная
безопасность.

7.
Взять шприц с иглой в правую руку так,
чтобы указательный палец фиксировал
иглу сверху.

Профилактика
осложнений.

8.Обработать
место инъекции шариком со спиртом,
попросить пациента зажать кулачок.

Инфекционная
безопасность.

9.
Зафиксировать вену большим пальцем
левой руки, про­колоть кожу (игла
срезом вверх) и войти в вену на 1/3 длины
иглы.

Эффективность
выполне­ния процедуры.

10.
Оттянуть поршень на себя, убедиться
в появлении крови в шприце.

Контроль
попадания в вену.

11.
Продолжать тянуть поршень на себя,
набирая нужное количество крови, не
снимая жгута.

Эффективность
выполне­ния процедуры.

12.
Левой рукой развязать жгут, прежде
чем извлечь иглу и попросить пациента
разжать кулачок.

Профилактика
осложнений.

13.
Приложив шарик со спиртом к месту
инъекции, извлечь иглу, попросить
пациента согнуть руку в локте и
подержать ватку со спиртом 5-7 минут
(затем этот шарик поместить в
дез.раствор).

Инфекционная
безопасность.

Профилактика
осложнений.

14.
Выпустить медленно кровь по стенке
пробирки, находящейся в штативе.
Закрыть пробирку пробкой.

Достоверность
результатов анализа. Профилактика
осложнений.

3.
Окончание процедуры.

15.
Шприцы, иглы поместить в емкости для
дезинфекции, с заполнением всех
каналов.

Профилактика
ВБИ.

16.
Жгут, валик дезинфицировать после
каждого пациента.

Профилактика
ВБИ.

17.
Направление поместить в целлофановый
пакет.

Профилактика
ВБИ.

18.
Штатив с пробиркой поместить в
контейнер, закрыть крышкой и вместе
с направлением отправить в лабораторию.

Профилактика
ВБИ.

19.
Снять перчатки, погрузить их в дез.
раствор.

Профилактика
ВБИ.

20.
Провести гигиеническую антисептику
рук.

Предупреждение
химического воздействия талька на
кожу рук.

17.
Сделать запись о выполнении процедуры
в медицинскую документацию.

Контроль
кол-ва выполненных процедур,
преемственность в работе медсестры.

Осложнения
при заборе крови из вены на анализ.

1.
Невозможность пункции вены (анатомические
особенности, флебиты и др.).

2.
Прокол вены.

3.
Гематома.

4.
Тромбирование иглы (кровь брать иглами
большого размера).

Взятие
крови из вены на ВИЧ-исследование.

1.
Работайте осторожно, чтобы исключить
ранения иглой, пробиркой. Категорически
запрещается использовать пробирки с
отбитыми краями. Используйте средства
личной защиты: маску, резиновые перчатки,
защитный экран, полиэтиленовый фартук.
Все повреждения кожи на руках перед
надеванием резиновых перчаток накройте
лейкопластырем или напальчником. В
процедурном кабинете обязательно
должна быть полностью укомплектована
«Аварийная аптечка» для профилактики
гемоконтактных инфекций.

2.
Пробирку с кровью пронумеруйте. Номер
на пробирке и направлении должен
совпадать.

3.
В асептических условиях по общепринятым
правилам из вены пациента возьмите 5 мл
крови и вылейте в сухую центрифужную
пробирку с делениями.

Читайте также:  Как делают развернутый анализ крови

4.
Закройте пробирку резиновой пробкой.

5.
Кровь в холодильнике может храниться
не более суток. Не подлежит доставке в
лабораторию гемолизированная
кровь
.

6.
Пробирки в лабораторию доставьте в
контейнере с уплотнителем. На дно
контейнера положите в несколько слоев
полотняную салфетку.

7.
Отдельно доставьте направление, где
указаны данные о лицах, у которых взята
кровь.

Примечание:
При
взятии крови на BИЧ-инфекцию в направлении
не указываются паспортные данные
пациента, а проставляется соответствующий
шифр.

Образец
этикетки – направление биоматериала
для лабораторное исследование
Название
лаборатории (клиническая, биохимическая,
бактериологическая, цитологическая и
др.).
Название биоматериала и вида
анализа.
Фамилия, имя и отчество
пациента. Возраст. Пол.
Лечебное
учреждение, отделение или домашний
адрес (для aмбулаторных
пациентов).
Диагноз.
Фамилия врача.
Фамилия медсестры. Дата.

Взятие
крови из вены на биохимическое
исследование.

Кровь
на биохимическое исследование берет
процедурная медсестра.

Необходимо
иметь:

1.Перчатки.

2.
Чистая пробирка.

3.
Одноразовый шприц 10 мл..

4.
Берется 5-6 мл крови одноразовым шприцем,
выпускается мед­ленно в пробирку по
стенке, чтобы не разрушались форменные
элементы крови.

5.
Медсестра оформляет направление в
биохимическую лабораторию.

Взятие
крови из вены системой вакуумного забора
крови
VACUPLUS .

Система
VacuPlus обеспечивает: 

 Максимальную
безопасность медицинского персонала
во время процедуры взятия крови —
конструкция систем VacuPlus полностью
исключает контакт крови пациента с
окружающей средой. 

 Быстроту
взятия крови (5 -10 секунд). 

 Возможность
набрать кровь в две и более пробирки
за очень короткий промежуток времени
и без повторного введения иглы в вену. 

 Максимально
точное соблюдение соотношения
кровь-антикоагулянт. 

 Простоту
и надежность маркировки и транспортировки
образцов 

 Возможность
использования пробирки без открывания
крышки при работе с некоторыми
автоматическими анализаторами. 

А
также система обеспечивает максимально
точное соблюдение правил преаналитического
этапа лабораторных исследований,
существенно сокращая возможность
выдачи ошибочного результата.
Разнообразие компонентов системы
позволит вам удобно и безопасно взять
кровь для любых видов лабораторного
анализа. VacuPlus — полностью закрытая
вакуумная система для взятия крови
из вены. 

Система VacuPlus аналогична
обычному шприцу, но вместо поршня
используется перепад давления,
возникающий благодаря тому, что в
пробирке создан вакуум. Система
максимально удобна в обращении и
обеспечивает защиту медицинского
персонала от возможного заражения
при работе с инфицированной
кровью. 

Система VacuPlus состоит
из трех компонентов: 
    1.
Специальная игла; 
    2.
Иглодержатель; 
    3.
Вакуумная пробирка VacuPlus с крышкой.

Процедура
взятия крови с помощью вакуумных систем
VACUPLUS®

1.
Взять иглу VacuPlus® и снять защитный
колпачок со стороны, закрытой резиновой
мембраной 

Забор крови на общий анализ техника выполнения

2.
Вставить иглу в держатель и завинтить
до упора. Подготовить все необходимые
пробирки. 

Забор крови на общий анализ техника выполнения

3.
Снять защитный колпачок со второй
стороны иглы, вставить выбранную
пробирку крышкой в держатель 

Забор крови на общий анализ техника выполнения

Не
прокалывая резиновую заглушку в
крышке пробирки, ввести систему
держатель-игла в вену пациента, как
это делается при обычной процедуре
взятия крови шприцем. 

Забор крови на общий анализ техника выполнения

В
этот момент кровь не проходит по игле,
так как второй ее конец закрыт резиновой
мембраной 

4. Вставить пробирку
в держатель до упора. При этом игла
прокалывает резиновую мембрану и
резиновую пробку в крышке пробирки
— образуется канал между пробиркой с
вакуумом и полостью вены. Кровь
проходит в пробирку до тех пор, пока
не компенсируется созданный в пробирке
вакуум (если кровь не идет — это значит,
что игла прошла вену насквозь — в этом
случае нужно немного вытянуть иглу
(но не вынимать!), пока кровь не пойдет
в пробирку). 

Забор крови на общий анализ техника выполнения

Если
используете жгут — снимите его, как
только кровь начнет поступать в
пробирку. 

5. После прекращения
тока крови извлечь пробирку из
держателя. 

Забор крови на общий анализ техника выполнения

Резиновая
мембрана возвращается в исходное
положение, перекрывая ток крови по
игле. При необходимости в держатель
вставляется ряд других пробирок для
получения нужного объема крови для
различных исследований. Повторно
вводить иглу для этого не нужно. 

6.
При использовании пробирок с добавками
необходимо аккуратно перевернуть
пробирку 8-10 раз для полного смешения
крови с реагентами или активатором
образования сгустка. После того как
последняя пробирка заполнилась,
вынуть держатель с иглой из вены. 

7.
Для полной безопасности рекомендуется
аккуратно снять иглу с держателя,
используя специальный контейнер
VacuPlus®. 

Процедура
взятия крови с помощью вакуумных систем
S-Monovette®.

Закрытые
системы взятия венозной крови S-Monovette®
представляют
собой новое поколение вакуумных шприцев
контейнеров с реактивами. Их использование
имеет следующие преимущества перед
традиционными способами:

  • Полностью
    исключается контакт медперсонала с
    кровью на всех этапах взятия крови и
    ее транспортировки.

  • Изготовленные
    из особо прочного пластика, S-Monovette®
    позволяют осуществить безопасную
    доставку крови на любые расстояния.

  •  Благодаря
    наличию широкого спектра S-Monovette®
    с заранее добавленными реагентами для
    различных видов анализов (ЭДТА для
    гематологии, цитрат натрия для коагулогии,
    активатор свертывания для получения
    сыворотки), значительно облегчается
    работа медсестер и лаборатории.
    Международная цветовая маркировка S-Monovette®
    предотвращает их не правильное
    применение.

  • Уменьшается
    количество ошибочных анализов, связанных
    с неправильным взятием проб крови и
    неверным соотношением реагентов.

  • В
    зависимости от состояния вен пациента,
    можно применять как вакуумный, так и
    шприцевой метод взятия крови.

В
отличие от обычных вакуумных систем,
вакуум в S-Monovette®
создается непосредственно перед взятием
крови.

  • Закручивающаяся
    крышка предотвращает «аэрозольный
    эффект» при открывании.

(см.
приложение)

Соседние файлы в папке ЛАБЫ

  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #

Источник