Техника взятия крови для клинического анализа крови
1.
Клиническая трактовка результатов
общего анализа крови (см. ход занятия,
п.2-5).
2.
Проведение макроскопического,
микроскопического, бактериоскопического
и бактериологического исследования
мокроты (см. ход занятия, п.7).
3.
Проведение макроскопического,
физико-химического и бактериологического
исследования плевральной жидкости (см.
ход занятия, п.9).
4.
Клиническая оценка результатов
лабораторного анализа мокроты и
плевральной жидкости (см. ход занятия,
п.7,9).
5. Ход занятия.
В
ходе занятия обсуждаются контрольные
вопросы согласно темы занятия и
отрабатываются практические навыки
(п.4.).
1. Техника взятия крови для общего клинического анализа.
Взятие
крови для общего клинического анализа
крови производят путем укола в мякоть
IV
пальца левой руки или мочку уха. Для
укола палец обрабатывают ватным шариком,
смоченным раствором антисептика, чаще
всего септоцида. Укол лучше производить
сбоку, где более густая капиллярная
сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от
толщины кожи. Кровь из ранки должна
вытекать свободно, так как при сильном
надавливании на палец возможно
примешивание тканевой жидкости,
приводящее к искажению результатов.
Не
рекомендуется брать кровь сразу после
физической и умственной нагрузки, приема
медикаментов, физиотерапевтических
процедур, диагностических манипуляций.
Необходимо производить забор крови
натощак. Повторные исследования
желательно проводить в одни и те же
часы, поскольку морфологический состав
крови подвержен колебаниям на протяжении
суток.
Для
исследования гемограммы используют
пробирочный метод взятия крови. Точная
дозировка крови и разводящих жидкостей
достигается с помощью калиброванных
пипеток и дозаторов.
Общий клинический
анализ крови включает определение
следующих компонентов:
1)
количество гемоглобина;
2)
количество эритроцитов;
3)
индексы красной крови (цветовой показатель
и среднее содержание гемоглобина в
одном эритроците);
4)
скорость оседания эритроцитов (СОЭ);
5)
гематокритное число;
6)
осмотическая резистентность эритроцитов
и их диаметр;
7)
количество ретикулоцитов;
8)
количество лейкоцитов и лейкоцитарная
формула;
9)
количество тромбоцитов.
2.
Методика
определения концентрации гемоглобина,
количества эритроцитов и ретикулоцитов.
Расчет индексов красной крови: цветовой
показатель и среднее содержание
гемоглобина в одном эритроците.
Диагностическое значение. Гематокритное
число.
Предложено
много методов определения концентрации
гемоглобина. Важнейшие из этих методов
– колориметрические. Чаще колориметрируют
цветные производные гемоглобина: хлорид
гематина, цианметгемоглобин,
карбоксигемоглобин и др. Концентрацию
гемоглобина измеряют фотоэлектроколориметрами,
приборами ГФ-2 и ГФ-3, гемоглобинометрами
при автоанализаторах.
Унифицированным
является цианметгемоглобиновый
фотометрический метод. Он основан на
превращении гемоглобина в цианметгемоглобин
при добавлении к крови реактива (раствора
Драбкина), содержащего железосинеродистый
калий и цианид калия. Концентрацию
цианметгемоглобина измеряют фотометрически,
а расчет количества гемоглобина
производят по калибровочному графику.
Гематиновый
метод Сали основан на превращении
гемоглобина при добавлении к крови
хлористоводородной кислоты в хлорид
гематина (хлоргемин) коричневого цвета,
интенсивность окраски которого
пропорциональна содержанию гемоглобина.
В настоящее время этот метод не имеет
широкого применения.
В
норме концентрации гемоглобина
составляет:
—
у женщин 120 — 150 г/л;
—
у мужчин 130—
160 г/л
.
Увеличение
концентрации гемоглобина наблюдается
у людей, живущих в условиях высокогорья,
при обезвоживании у работников горячих
цехов, после обильной рвоты и при диарее,
при массивных ожогах, при эритремии и
др.
Уменьшение
концентрации гемоглобина наблюдается
при анемиях, а так же при обильном
употреблении жидкости, гемодилюции
лекарственными инфузионными средствами
и др.
Определение
количества эритроцитов крови выполняется
следующими методами:
Подсчет
эритроцитов в счетной камере с сеткой
Горяева.
Принцип
метода: в
строго определенном объеме камеры
подсчитывают под микроскопом клеточные
элементы, а затем производят перерасчет
полученного результата на 1 мкл крови.
С целью уменьшения количества клеток,
подлежащих подсчету, кровь предварительно
разводят в смесителях или пробирках.
Оборудование и
реактивы:
смесители
(меланжеры) или пробирки для разведения
крови;3
% раствор хлорида натрия или жидкость
Гайема для разведения эритроцитов
(ртути хлорид — 0,5 г; натрия сульфат — 5,0
г; натрия хлорид — 1,0 г; вода дистиллированная
— до 200 мл);
счетная
камера Горяева;
микроскоп.
Смесители
представляют собой капиллярную пипетку
с резервуаром, содержащим бусинку,
способствующую смешиванию крови с
жидкостью для разведения. На смесителе
нанесены метки: одна — 0,5, другая — перед
входом в резервуар — 1,0, третья — у выхода
из ампулы — 101. При набирании крови в
пипетку до метки 0,5 она будет разведена
в 200 раз, до 1,0 — в 100 раз.
Счетная
камера представляет собой стеклянную
пластинку с выгравированной или
наклеенной сеткой Горяева. Обычно
на одной пластинке имеются две сетки,
разделенные между собой глубокой
канавкой, что позволяет использовать
одну сетку для подсчета эритроцитов, а
другую — для подсчета лейкоцитов. По
краям сеток находятся возвышения, к
ним притираются покровные стекла,
которые образуют верхнюю границу камеры.
Притирать покровные стекла нужно
очень плотно до появления радужных
колец (так называемых колец Ньютона),
ибо только в этом случае будут соблюдены
необходимые высота (1/10 мм) и объем счетной
камеры. Сетка Горяева имеет 225 больших
квадратов (15 х15), 25 из которых разделены
на малые, по 16 в каждом. Каждая сторона
малого квадрата равна 1/20 мм, а так как
высота камеры составляет 0,1 мм, то
объем счетной камеры, ограниченной
одним малым квадратом, будет равен
1/4000 мм3.
Ход
исследования: в
сухую чистую пробирку или смеситель
отмеривают раствор хлорида натрия или
жидкость Гайема. Пипеткой от гемометра
Сали набирают кровь из пальца, вытирают
кончик пипетки марлей или фильтровальной
бумагой, выдувают кровь на дно пробирки
с жидкостью для разведения. Подготавливают
камеру Горяева. Затем концом круглой
стеклянной палочки или пастеровской
пипеткой наносят каплю разведенной
крови на среднюю пластинку камеры у
края покровного стекла.
Интерпретация
полученных данных. Подсчет
эритроцитов производят спустя 1-2 мин
после заполнения камеры (когда
эритроциты осядут на дно камеры) при
малом увеличении микроскопа (объектив
8х, окуляр — 10х или 15х) и при затемненном
поле зрения (при опущенном конденсоре
или прикрытой диафрагме). Считать
эритроциты необходимо в 5 больших
квадратах, т. е. в 80 маленьких, расположенных
по диагонали. Подсчету подлежат все
эритроциты, лежащие внутри малого
квадрата, и те, которые находятся на
левой и верхней линиях. Эритроциты,
расположенные на правой и нижней линиях,
не считают, так как они будут учтены в
следующем квадрате.
Количество
эритроцитов в 1 мкл (мм3)
крови высчитывают по следующей
формуле:
Х=(А х 4000 х В)/Б,
где
X
— количество форменных элементов в 1 мкл
крови; А — количество
форменных элементов, сосчитанных в
определенном количестве малых
квадратов (для эритроцитов — в 80); Б —
количество сосчитанных малых квадратов
(80); В — степень разведения крови (для
подсчета эритроцитов -100 или 200); 4000 —
величина, умножая на которую, мы получаем
количество клеток в 1 мкл (1 мм3),
так как объем 1 маленького квадрата
равен 1/4000 мм.
Для
перевода в систему СИ (пересчет на 1 л
крови) полученную цифру умножают на
106
(или количество целых единиц умножают
на 1012).
Методика
подсчета эритроцитов в счетной камере
достаточно точна (ошибка может
достигать 2,5 %), но весьма трудоемка.
Ошибки могут быть обусловлены:
образованием сгустка, недостаточным
количеством подсчитанных квадратов,
несоблюдением условий, обеспечивающих
правильную высоту счетной камеры
(притирание покровных стекол без
образования радужных колец), неравномерным
заполнением камеры (образование пузырьков
воздуха), подсчетом эритроцитов без
выжидания 1-2 мин (эритроциты не успевают
осесть и результат оказывается
заниженным), плохо вымытыми смесителем
и счетной камерой, недостаточной
квалификацией лаборанта, выполняющего
исследование.
Фотометрический
метод подсчета количества эритроцитов
– основан на фотометрическом измерении
степени погашения света определенных
длин волн взвесью эритроцитов. Процент
задержанного света прямо пропорционален
числу эритроцитов. Для этого используют
приборы типа эритрогемометров и
электрофотоколориметры.Электронно-автоматический
метод. Используются приборы автоматического
счета частиц крови, работающие по
импульсному и сцинтиляционному принципу
(счетчики «Целлоскоп» и «Культер»,
автоанализаторы «Техникон»).
Нормальное
количество эритроцитов:
—
у женщин 3.7 – 4.7 х 1012/л;
—
у мужчин 3,9
— 5,1 х
1012/л.
Увеличение
количества эритроцитов наблюдается:
1)
при эритремии (абсолютный первичный
эритроцитоз);
2)
при гипоксии: обструктивная вентиляционная
недостаточность, при наличии
альвеолярно-капиллярного блока –
фиброзирующий альвеолит и легочные
васкулиты, врожденные пороки сердца с
шунтом справа налево и др;
3)
при гемоглобинопатиях (наследственные
заболевания, характеризующиеся наличием
в эритроцитах аномальных гемоглобинов);
4)
при вторичных абсолютных эритроцитозах,
связанных с повышенной продукцией
эритропоэтинов (рак почек, гидронефроз
и поликистоз почек, рак печени и др.);
5)
при вторичных абсолютных эритроцитозах,
связанных с избытком адренокортикостероидов
или андрогенов (феохромоцитома, синдром
/ болезнь Иценко-Кушинга, гиперальдостеронизм);
6)
при относительных эритроцитозах
вследствие обезвоживания, стрессов,
алкоголизма, повышенной физической
нагрузки, проживания в условиях
высокогорья и др.
Уменьшение
количества эритроцитов характерно для
анемий различного происхождения. От
истинной анемии, характеризующейся
абсолютным уменьшением эритроцитарной
массы, нужно отличать анемию
(эритроцитопению) вследствие гидремии
(снижение гематокрита из-за увеличения
объема плазмы).
Уменьшение
количества эритроцитов (анемия,
эритроцитопения) наблюдается при
постгеморрагических анемиях, анемиях
вследствие недостаточного кровеобразования
(железодефицитная, витамин-В12- и
фолиеводефицитная), анемиях в результате
усиленного распада эритроцитов
(гемолитические), железоперераспределительных
и метапластических (при опухолевых
заболеваниях крови) анемиях и др.
Расчет
индексов красной крови: цветовой
показатель и среднее содержание
гемоглобина в одном эритроците.
Под
индексами красной крови понимают среднее
содержание гемоглобина в одном эритроците
и цветовой показатель.
Определение
среднего содержания гемоглобина в одном
эритроците производят делением
концентрации гемоглобина на число
эритроцитов в одинаковом объеме крови.
В норме 1 эритроцит содержит 33 пг
гемоглобина (допустимые колебания
27-33.4 пг).
Величину
33 пг условно принимают за единицу (норма
содержания гемоглобина в одном эритроците)
и обозначают как цветовой показатель.
Цветовой показатель
отражает насыщение эритроцита
гемоглобином.
Вычисление
цветового показателя (ЦП) производят
по формуле:
ГЕМОГЛОБИН
(в г/л) х 3
ЦП =
——————————————————————-;
три первые цифры
числа эритроцитов (в миллионах)
ГЕМОГЛОБИН (в г/%)
ЦП =
——————————————————————-;
две первые цифры
числа эритроцитов (в миллионах)
ГЕМОГЛОБИН (в условных единицах)
ЦП =
——————————————————————-
две первые цифры
числа эритроцитов (в миллионах)
В
норме цветовой показатель равен 0,85 –
1,05.
Индексы
красной крови важны для суждения о
нормо-, гипер-, гипохромии эритроцитов.
Гиперхромия
– увеличение среднего содержания
гемоглобина в 1 эритроците, дающее
цветовой показатель выше 1.05, зависит
исключительно от увеличения объема
эритроцитов, а не от повышенного насыщения
их гемоглобином, так как нормальный
эритроцит насыщен гемоглобином до
предела. Гиперхромия характерна для
мегалобластных анемий, обусловленных
дефицитом витамина В12
и фолиевой кислоты.
Гипохромия
– уменьшение среднего содержания
гемоглобина в 1 эритроците, дающее ЦП
ниже 0.85, может быть так же следствием
уменьшения объема эритроцитов. Гипохромия
служит истинным показателем или дефицита
железа в организме, или железорефрактерности.
Гипохромия наблюдается при хронических
кровопотерях, железодефицитных и
железорефрактерных анемиях, свинцовой
интоксикации и др.
Нормохромия
– это нормальное содержание гемоглобина
в эритроците (ЦП -0,85-1,05). Нормохромные
анемии развиваются при равномерном
уменьшении содержания эритроцитов и
количества гемоглобина и наблюдается
в случаях острых кровопотерь, при
гипопластической анемии, при гемолизе,
сепсисе.
Гематокрит
(гематокритное число) – дает представление
о соотношении между объемом плазмы и
объемом форменных элементов крови.
Определяется с помощью следующих
методов.
Метод
центрифугирования в гематокритной
трубке.Электронно-автоматический
метод (с помощью аппаратов «Целлоскоп»
и «Культер»).
Нормальные величины
гематокрита:
— у женщин 36-42%;
— у мужчин 40-48%.
Гематокритное
число учитывается при диагностике
полицитемических и олигоцитемических
состояний.
Ретикулоциты
– это молодые эритроциты, содержащие
базофильную субстанцию в виде сеточки,
представленную агрегированными
рибосомами и митохондриями. Сеточка
обнаруживается при прижизненной окраске
мазков крови 1% раствором бриллианткрезил
синего. Подсчет производится под
иммерсионным объективом по отношению
к 1000 эритроцитов.
В
норме содержание ретикулоцитов в
периферической крови составляет 2-10º/○○
(0,2-1,2%). Ретикулоцитоз отображает степень
регенераторной способности костного
мозга. При гемолизе, кровопотерях
эритропоэз в нормальном костном мозге
активизируется, и число ретикулоцитов
в нем и в периферической крови возрастает.
Отсутствие роста числа ретикулоцитов
в выше указанных ситуациях свидетельствуют
о пониженной функции костного мозга.
Ретикулоцитоз
при отсутствии анемии говорит о скрытых,
но хорошо компенсированных потерях
крови. Высокий ретикулоцитоз наблюдается
при адекватном лечении витамин-В12-дефицитной
анемии.
Источник
Кровь
из пальца берёт лаборант. Этот анализ
необходим для количественного и
качественного изучения форменных
элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов,
тромбоцитов), определения количества
в крови гемоглобина и скорости оседания
эритроцитов (СОЭ). Такой анализ называют
общим анализом крови. Кроме того, в ряде
случаев
из пальца берут кровь для определения
содержания в крови глюкозы, а также
свёртываемости крови и времени
кровотечения.
Кровь
из вены берёт процедурная медицинская
сестра посредством пункции в большинстве
случаев локтевой вены; кровь смешивается
в пробирке с противосвёртывающим
веществом (гепарин, натрия цитрат).
Забор крови из вены осуществляют с
целью количественного изучения
биохимических показателей крови (так
называемых печёночных проб,
ревматологических проб, содержания
глюкозы, фибриногена, мочевины,
креатинина), обнаружения возбудителей
инфекции (взятие крови на гемокультуру
и определение чувствительности к
антибиотикам) и антител к ВИЧ. Объём
забираемой из вены крови зависит от
количества определяемых компонентов
— обычно из расчёта 1-2 мл на каждый вид
анализа.
Взятие крови на исследование из вены
Противопоказания
к процедуре определяет врач. К ним
относят крайне тяжёлое состояние
пациента, спавшиеся вены, судороги,
возбуждённое состояние пациента.
Весь
использованный во время манипуляции
материал необходимо продезинфицировать.
Резиновый
жгут и клеёнчатый валик протирают
дважды ветошью, смоченной дезинфицирующим
раствором (например, 3% раствором
хлорамина Б), и промывают проточной
водой. Использованный ватный шарик с
кровью обязательно следует забрать у
пациента и, прежде чем поместить его в
отходы, замочить в дезинфицирующем
растворе не менее чем на 60 мин.
Дезинфицирующим раствором необходимо
обработать также и рабочий стол.
Необходимое
оснащение:
• одноразовые
(стерильные) шприцы с иглами;
• стерильный
лоток с ватными шариками и пинцетом;
• резиновый
жгут, резиновый валик и салфетка;
• 70%
раствор спирта, чистые пробирки с
пробочками в штативе;
• спецодежда
(халат, маска, стерильные перчатки);
• лоток
для использованного материала;
• тонометр,
фонендоскоп, противошоковый набор
лекарственных средств.
Порядок
выполнения процедуры:
1.
Подготовить пациента — помочь ему занять
удобное положение сидя или лёжа.
2.
Подготовиться к процедуре: пронумеровать
пробирку и направление на анализ (одина-
| Вычисление | Цветовой |
ковым
порядковым номером), вымыть и высушить
руки, надеть спецодежду, обработать
руки ватными шариками, смоченными 70%
раствором спирта, надеть перчатки.
3.
Подложить под локоть пациента клеёнчатый
валик для максимального разгибания
локтевого сустава.
4.
Освободить от одежды руку или поднять
рукав рубашки до средней трети плеча
таким
образом,
чтобы был обеспечен свободный доступ
к области локтевого сгиба.
5.
Наложить резиновый жгут в области
средней трети плеча выше локтевого
сгиба на 10 см и затянуть жгут, чтобы
петля жгута была направлена вниз, а
свободные его концы -вверх (чтобы концы
жгута во время венепункции не попали
на обработанное спиртом поле).
6.
Обработать одетые в перчатки руки 70%
раствором спирта.
7.
Предложить пациенту «поработать
кулаком» — несколько раз сжать и разжать
кулак для хорошего наполнения вены.
8.
Попросить пациента сжать кулак и не
разжимать до тех пор, пока медсестра
не разрешит; при этом дважды обработать
кожу в области локтевого сгиба ватными
шариками, смоченными 70% раствором
спирта, в одном направлении — сверху
вниз, сначала широко (размер инъекционного
поля составляет 4×8 см), затем —
непосредственно место пункции.
9.
Найти наиболее наполненную вену; затем
кончиками пальцев левой руки оттянуть
кожу
локтевого
сгиба в сторону предплечья и фиксировать
вену.
10.
В правую руку взять приготовленный для
пункции шприц с иглой.
11.
Провести венепункцию: держа иглу срезом
вверх под углом 45°, ввести иглу под
кожу;
затем,
уменьшив угол наклона и держа иглу
почти параллельно кожной поверхности,
продвинуть иглу немного вдоль вены и
ввести её на треть её длины в вену. При
проколе вены возникает ощущение
«провала» иглы в пустоту.
12.
Убедиться, что игла находится в вене,
слегка потянув поршень иглы на себя;
при этом
в
шприце должна появиться кровь.
13.
Не снимая жгут, продолжить тянуть
поршень шприца на себя для набора
необходимого количества крови.
14.
Развязать жгут и предложить больному
разжать кулак.
15.
Прижать ватный шарик, смоченный в 70%
растворе спирта, к месту инъекции и
быстро извлечь иглу.
В
ряде случаев во избежание повреждения
форменных элементов крови (например,
при исследовании агрегационной функции
тромбоцитов) кровь нельзя набирать
шприцем. В такой ситуации следует
набирать кровь «самотёком» — подставить
под иглу (без шприца) пробирку и подождать,
пока она заполнится необходимым
количеством крови.
16.
Предложить больному согнуть руку в
локтевом сгибе вместе с ватным шариком
и оставить так на 3-5 мин для остановки
кровотечения.
17.
Снять иглу со шприца, медленно выпустить
кровь в пробирку по её стенке (быстрое
поступление крови в пробирку может
привести к её вспениванию и, следовательно,
гемолизу крови в пробирке) и закрыть
пробирку пробочкой.
18.
Сложить использованные материалы в
специально приготовленный лоток, снять
перчатки.
19.
Спросить у пациента о его самочувствии,
помочь ему встать или удобно лечь.
20.
Оформить направление в лабораторию,
поместить штатив с пробирками в ёмкость
для транспортировки биологических
жидкостей (бикс) и отправить в лабораторию
для исследования.
NB!При
подозрении на гепатит или ВИЧ-инфекцию
у больного ёмкость с кровью необходимо
дополнительно парафинировать или
закрыть лейкопластырем и поместить в
герметичный контейнер.
Источник