Общий анализ крови у свиньи

Любой организм в соответствии с генотипом даже при наличии экстремальных условий обладает способностью сохранять постоянство гомеостаза. Очевидно, поэтому гематологические, биохимические и другие показатели различных систем отличаются стабильностью, подвергаясь под воздействием внешней среда лишь модификационной изменчивости, проявляющейся в незначительных отклонениях от нормы. На гематологические, биохимические и другие показатели существенное влияние оказывает не только физиологическое состояние животного (возраст, беременность, продуктивность), но и условия кормления, содержания, эксплуатации, а также среда обитания. Вместе с тем картина крови сохраняет свои индивидуальные и видовые особенности.
Наиболее научно обоснованным и присущим современному этапу развития биологической пауки, в том числе медицины и ветеринарии, является математический метод установления нормативов, основанный па теории вероятности с использованием исходных материалов, охватывающих результаты исследований больших групп разного возраста, пола, продуктивности здоровых животных, находящихся в различных климатических зонах.
При изучении особенностей вариационного распределения гематологических показателей было установлено, что для большинства из ниx характерно распределение, близкое к нормативному. Лишь в распределении эозинофилов, палочкоядерных нейтрофилов, ретикулоцитов и СОЭ имеется некоторая асимметрия. Для гематологических показателей, как уже принято в биологических исследованиях, нормативы должны иметь уровень достоверности не менее 0,05, т. е. норма — 95% здоровых животных и только в 5% случаев возможны отклонения, причины которых не известны. К сожалению, эти положения при установлении нормативов выполнены не всегда, так как были получены намного раньше, чем была разработана теория вероятности. Поэтому в предложенных многочисленными авторами нормативах морфологического состава кропи для ратных видов животных представлены только средине значения и их экстремальные отклонения (табл. 2, 3).

Гематологические показатели у сельскохозяйственных и домашних животных

Определенные трудности вызывает вопрос о необходимости создания отдельных нормативов в зависимости от географических зон, различающихся природно-экономическими условиями. По-видимому, только в местностях, резко отличающихся, например, по высоте над уровнем моря, средней годовой температуре, разводимому типу скота, целесообразно иметь свои нормативы, что очень важно для изучения краевой патологии. Вместе с тем независимо от условий для объективной оценки результатов исследований необходимо знать особенности нормальной картины крови определенного вида животного.
Лошадь. Данный вид животного имеет гранулоцитарный профиль крови, когда нейтрофилы преобладают над остальными клетками. Специфическая зернистость в эозинофилах является наиболее крупной из аналогичных клеток всех животных. Эритроциты образуют цепочки, как и у человека, так называемые монетные столбики. СОЭ выражена и довольно высокая. Следует отметить, что лошади резко отличаются по показателям красной крови в зависимости от типа. Рысистые лошади (горячие) имеют более высокое содержание в крови эритроцитов и уровень гемоглобина, чем рабочие (холодные). В норме у них в крови присутствуют в незначительных количествах ретикулоциты, число которых увеличивается при различных анемиях.
Крупный рогатый скот. До 1 мес после рождения телята имеют нейтрофильный профиль крови при повышенном содержании палочкоядерных форм нейтрофилов, а в последующее время у крупного рогатого скота преобладают лимфоциты над гранулоцитами. СОЭ не выражена, поэтому обычно методически не исследуется. Среди эритроцитов отмечается анизоцитоз. Ретикулоциты и полихроматофилы в норме и даже при патологии в крови не появляются.
Овца. Данный вид животных имеет наиболее выраженный лимфоцитарный профиль крови с самого рождения. Зрелые нейтрофилы по сравнению с крупным рогатым скотом более сегментированы, число которых составляет обычно 3— 4 фрагмента. Количество эритроцитов по сравнению с крупным рогатым скотом несколько выше, но они намного меньше. Ретикулоциты отсутствуют. В норме анизоцитоз, пойкилоцитоз, СОЭ не выражена.
Коза. У данного вида наиболее высокие показатели красной крови, которые завысят от мест их обитания. Высокогорные козы имеют более высокое содержание в крови эритроцитов и уровень гемоглобина. Эритроциты очень мелкие, ретикулоциты отсутствуют. СОЭ также не выражена.
Свинья. Количество лейкоцитов в крови свиней несколько выше, чем у других видов сельскохозяйственных животных. Лимфоциты являются преобладающими клетками белой крови. Среди нейтрофилов число палочкоядерных форм клеток повышено. Ретикулоциты и полихроматофилы постоянно присутствуют как в норме, так при патологии.
Собака. Как и лошадь, собака имеет нейтрофильный профиль крови. В норме в небольших количествах даже у взрослых особей, встречаются полихроматофилы и ретикулоциты, а иногда эритроциты с тельцами Жоли и даже нормобласты. У данного вида выражены, как и у лошади, породные различия в составе красной крови. Гончие собаки имеют более высокое содержание эритроцитов и уровень гемоглобина.
Кошка. Количество лейкоцитов у данного вида животного колеблется в широких пределах (от 10 до 20 тыс. клеток в 1 мкл крови). Соотношение гранулоцитов и лимфоцитов почти равное. В отличие от других видов млекопитающих у кошек гранулы в эозинофилах расположены густо и часто имеют палочковидную форму неодинаковой величины.
Кролик. Нейтрофилы у кролика содержат очень крупную зернистость напоминающую по размерам и окраске зернистость эозино-филов, и поэтому эти клетки были названы псевдоэозинофилами. В картине красной крови, особенно в молодом возрасте, много полихроматофилов и реттисулоцитов.
Птицы. Количество лейкоцитов у всех видов птиц по сравнению с млекопитающими животными в несколько раз выше и колеблется в широких пределах (от 20 до 40 тыс. в 1 мкл крови). Профиль крови обычно лимфоцитарный. Зернистость в нейтрофилах, которая, как и у кролика, называется псевдоэозинофилами, в эозинофилах довольно сходная и представлена многочисленными эозинофильными гранулами различной величины и формы. Однако в эозинофилах гранулы обычно круглые и реже палочковидные, у псевдоэозинофилов, наоборот, гранулы, как правило, палочковидные с заострением на концах. Эритроциты у всех птиц содержат ядро и имеют эллипсовидную форму. Нередко встречаются полихромные эритроциты и клетки с витальной зернистостью. Тромбоциты также содержат ядро, т. е. являются настоящими клетками, а не пластинками, как у млекопитающих. Тромбоцита у птиц — самые мелкие клетки крови, приближающиеся по размеру к малым лимфоцитам.
Причины различий в морфологическом составе крови у различных видов животных не вполне ясны, но, вероятно, обусловлены особенностями обмена веществ. В практическом отношении важно значь, что животные с различным профилем крови (лимфоцитарный, нейтрофильный) несколько иначе реагируют на воздействие внутренних и внешних факторов. В частности, у лошадей, собак реакция па воспалительные процессы довольно сильная и выражается обычно в резком лейкоцитозе в результате значительного увеличения количества нейтрофилов со сдвигом «влево», вплоть до развития лейкемоидной реакции миелоидного типа (например, при хрониосепсисе). У крупного рогатого скота, наоборот, воспалительные процессы, даже хрониосепсис, не вызывают в крови значительных изменений, хотя реакция также однотипна, т. е. лейкоцитоз с нейтрофилезом и регенеративным сдвигом.
Следует также отметить, что у животных с лимфоцитарным профилем крови чаще наблюдаются лейкозы лимфоидной формы, а у животных с нейтрофильной картиной кропи преимущественно встречаются миелолейкозы. У кур, эритроциты которых имеют ядра, кроме того, встречаются эритробластозы, последние пока не описаны у других сельскохозяйственных животных.

Функциональные методы выделения и идентификации Т- и В-лимфоцитов крови
Определение фагоцитарной активности лейкоцитов
Определение некоторых физико-химических показателей крови
Методы лейкоконцентрации
Подсчет лейкоцитарной формулы и других цитограмм
Приготовление цитологических препаратов, методы их фиксации и окраски
Пункция кроветворных органов (техника и инструментарий)
Получение проб крови и отдельных их компонентов
Клиническая иммуногематология
Система свертывания крови и противосвертывающие механизмы

Источник

1Е. В. Курятова, 2Е. А. Карлова, 2О. П. Ильина

1Дальневосточный аграрный университет, г. Благовещенск, Россия

2Иркутская государственная сельскохозяйственная академия, г. Иркутск, Россия

При применении пробиотических препаратов происходят восстановительные процессы в печени и поджелудочной железе, на что указывает снижение количества щелочной фосфатазы, α-амилазы, нормализация коэффициента Де Ритиса (АСТ/АЛТ) в сыворотке крови, а также снижение количества билирубиновых фракций и глюкозы до физиологических пределов.

Ключевые слова: гастроэнтерит, биохимические показатели крови.

CHANGES OF BLOOD BIOCHEMICAL PARAMETERS OF WEANED PIGLETS AT NONSPECIFIC GASTROENTERITIS BEFORE AND AFTER TREATMENT

1Kuryatova E. V., 2Charles E. A., 2Ilina O. P.

1Far Eastern Agricultural University, Blagoveshchensk, Russia

2Irkutsk State Academy of Agricultural, Irkutsk, Russia

In the application of probiotics occur restorative processes in the liver and pancreas, as indicated by the decrease in the number of alkaline phosphatase, α-amylase, the normalization factor De Ritis (AST / ALT) levels in the blood serum, as well as reducing the amount of bilirubin fractions and glucose to physiological limits.

Keywords: gastroenteritis, blood biochemistry.

Эффективность ведения свиноводства зависит от ветеринарного благополучия свиноводческих хозяйств. Заболевания молодняка свиней продолжают оставаться одной из серьезнейших причин, сдерживающих развитие свиноводства и наносящих ему значительный ущерб [4].

Согласно данным ежегодной статистической отчетности, представленной

Департаментом ветеринарии МСХ РФ, в общей структуре заболеваний подсосных поросят болезни органов пищеварения составляют до 75%, из них до 20%

занимают диспепсии, 26-35% – гастроэнтериты. Заболевания в раннем

постнатальном периоде жизни животных распространены повсеместно, развиваются в первые часы жизни, сопровождаются тяжелыми токсическими явлениями, характеризуются высокой смертностью [3]. Гибель поросят от желудочно-кишечных болезней достигает 40-50% [1]. На этом фоне профилактика и лечение гастроэнтеритов приобретает социальную значимость.

Цель данных исследований – изучить биохимическую картину крови поросят, больных неспецифическим гастроэнтеритом до и после лечения пробиотическими препаратами.

Материал и методики. Исследования проводили в период с 2006 по 2010 гг. в лаборатории кафедры физиологии и незаразных болезней животных, института ветеринарной медицины и зоотехнии Дальневосточного государственного

аграрного университета, а также в ФГУСП “Поляное”, села Крестовоздвиженки

Константиновского района Амурской области.

Объектом исследования были поросята-отъемыши, живой массой 10-13 кг, в возрасте 35-40 дней. Поросята содержались в маточниках. Животных кормили 5

раз в день, в одно и то же время суток. Рацион состоял из комбикорма СПК-3 для поросят-отъемышей и овсяной каши. Поение осуществлялось при помощи

автоматической поилки.

Для проведения опыта среди поросят-отъемышей отбирались животные с явной клинической картиной гастроэнтерита, из которых были сформированы четыре группы по 10 голов в каждой. Схема лечения представлена в таблице 1.

Одна группа – контрольная, три – опытных. В контрольной группе лечение проводилось по схеме, принятой в хозяйстве. В опытной 1 – применяли препарат

”Стрептобифит” на фоне лечения предприятия, в опытной 2 – “Ветом 3”, в

опытной 3 – применяли “Интестевит” на фоне лечения, принятого в хозяйстве.

Отбор крови для биохимических исследований осуществляли из ушной вены до лечения и после выздоровления.

Таблица 1 – Схема лечения животных в опыте

Группа	Кол-во животных в группе	Препарат	Способ введения	Доза	Кратность
Контроль- ная	10	Амоксоил-ретард (амоксициллин)	внутримышечно (в/м)	1 мл/10 кг	1 раз в день
Опытная 1	10	Амоксициллин	в/м	1 мл/10 кг	1 раз в день
Стрептобифид	перорально, с 20 мл воды за 30 мин до еды	50 мг/кг.	3 раза в день
Опытная 2	10	Амоксициллин	вм	1 мл/10 кг	1 раз в день
Ветом 3	перорально, с 20 мл воды за 30 мин до еды	50 мг/кг	3 раза в день
Опытная 3	10	Амоксициллин	вм	1 мл/10 кг	1 раз в день
Интестевит	перорально, с 20 мл воды за 30 мин до еды	50 мг/кг	3 раза в день

Общий белок определяли рефрактометрическим способом (A. M.Ахмедов,

1968), резервную щелочность – по А. П. Неводову, глюкозу – по Сомоджи (И. Ф. Храбустовский и соавт., 1974).

Содержание билирубина в сыворотке крови определяли по методу Ван ден Берга, аланинаминотрансферазы (АЛТ) и аспартатаминотрансферазы (АСТ) – колориметрическим методом, предложенным Райтманом и Френкелем (1957).

Определяли коэффициент Де Ритиса (отношение АЛТ к АСТ) (1972). Количество щелочной фосфатазы (ЩФ) в плазме крови определяли “по конечной точке” методом Бессея-Лоури-Брока.

Обсуждение результатов. При биохимических исследованиях крови больных животных (табл. 2) отмечалось увеличение общего белка крови на 26.2%, снижение резервной щелочности в 2 раза. Количество глюкозы по сравнению со здоровыми животными увеличилось на 48.1%. В данной группе общий билирубин возрастал в 2.6 раза в основном, за счет увеличения непрямого билирубина в 2.9

раза, при этом количество прямого билирубина увеличилось в 2.3 раза.

Отмечалось увеличение количества ферментов переаминирования в сыворотке крови. Резко увеличилось содержание аланинаминотрансферазы (АЛТ)

в 6.8 раза по сравнению со здоровыми животными. Также наблюдалось повышение количества аспартатаминотрансферазы (АСТ) в 5.3 раза. На этом фоне снижался коэффициент Де Ритиса и составлял 0.6±0.03, что говорит о поражениях паренхимы печени у больных поросят.

Щелочная фосфатаза (ЩФ) увеличилась по сравнению со здоровыми животными в 2.1 раза, что свидетельствует о внутрипеченочном холестазе и также указывает на дисфункцию печени. Увеличение α-амилазы у больных животных в

5 раз свидетельствует о функциональных нарушениях поджелудочной железы.

Таким образом, результаты клинического и биохимического анализа крови свидетельствуют о нарастании аутоинтоксикации с вовлечением панкриобилиарной системы, что подтверждается не только нарастающим

ацидозом, лейкоцитозом и увеличением количества общего белка, но и увеличением количества прямого и непрямого билирубина. Увеличение числа

панкреа — и гепатоспецифических ферментов крови АЛТ, АСТ, ЩФ, α-амилазы является результатом вовлечения в заболевание печени и поджелудочной железы.

При биохимических исследованиях крови после лечения (табл. 3) отмечалась нормализация белкового обмена, о чем свидетельствует снижение общего белка крови в первой опытной группе на 3.7 г/л, во второй и третьей – на 6.3 и 6.9 г/л соответственно. В группе, где лечение выполняли по схеме хозяйства, этот показатель оставался достаточно высоким. Наблюдалась нормализация кислотно — щелочного равновесия в крови, что выражалось увеличением резервной щелочности в первой опытной группе на 90.1%, в группе, где применяли ветом 3 – на 79.7%, в третьей опытной группе – в 2.2 раза больше, чем в контрольной группе.

Также нормализовался углеводный обмен, что подтверждало увеличение

количества глюкозы в первой опытной группе на 1.6 г/л, во второй – на 1.4 г/л, в третьей – на 1.2 г/л по сравнению с контрольной группой.

Таблица 2 – Биохимические показатели крови подопытных поросят до лечения,

M±m, n=40

Показатели крови	Норма	Группы
Здоровые	Больные
Резервная щелочность, об % СО2	17-35	26.3±1.52	13.5±2.11*
Общий белок, г/л	65-85	75.5±0.69	95.3±0.71*
Глюкоза, г/л	4-6.4	5.2±0.09	7.7±0.14**
Билирубин общий, ммоль/л	0-6.8	3.4±1.26	8.8±3.36*
Билирубин прямой, ммоль/л	0-4	1.6±0.19	3.6±0.42*
Билирубин непрямой, ммоль/л	0-2	1.8±0.31	5.2±0.84**
АЛТ, ед./л	7-15	10.1±1.04	91.6±7.22*
АСТ, ед./л	8-25	13.4±2.94	53.3±1.24*
Коэффициент Де Ритиса	1.3-1.4	1.3±0.06	0.6±0.03*
Щелочная фосфатаза, ед./л	140-200	183.9±2.37	383.6±4.04*
α-Амилаза, ед./л	320-1140	739.1±92.43	3779.3±514.20*

Примечание: * – р < 0.05, ** — р < 0.01

Общий билирубин значительно снизился в группе, где применяли интестевит в 3.5 раза. В группах, где использовали стрептобифид и ветом – 3, его значение снизилось в 2.6 и 2.4 раза соответственно.

Количество связанного билирубина в первой опытной группе снизилось в 2.2 раза, во второй и третьей – в 1.9 и 2.0 раза. Однако в контрольной группе наблюдали повышенное количество прямого билирубина. Величина непрямого билирубина во всех группах была в пределах физиологических границ.

Количественные показатели АЛТ в контрольной группе оставались выше показателя нормы в 3.5 раза. Во всех опытных группах отмечалось снижение данного показателя до физиологических пределов. В группе, где применяли стрептобифид, он снизился в 3.7 раза, ветом 3 – в 3.3 раза, в группе, где применяли интестевит – в 4 раза.

Наблюдалось снижение количества АСТ в группе, где использовали

стрептобифид на 73.5%, ветом 3 и интествит – на 55.3 и 92.1% соответственно, по сравнению с показателями контрольной группы.

Таблица 3 – Биохимические показатели крови подопытных поросят после лечения,

M±m, n=40

Показатели крови	Норма	Группы
контрольная	1 опытная	2 опытная	3 опытная
Резервная щелочность, об%СО2	17-35	20.2±0.92	38.4±0.93*	36.3±0.37*	43.2±0.54**
Общий белок, г/л	65-85	88.4±1.37	84.7±3.61*	82.1±3.72*	81.5±2.24*
Глюкоза, г/л	3.5-6.4	3.7±0.61	5.3±0.79*	5.1±1.38*	4.9±0.67**
Билирубин общий, ммоль/л	0-6.8	7.3±1.26	3.3±0.84*	3.4±0.53*	3.1±0.71**
Билирубин прямой, ммоль/л	0.9-3.4	5.5±0.42	2.6±0.13*	2.8±0.22*	2.7±0.75*
Билирубин непрямой, ммоль/л	0.0-3.4	1.8±0.74	0.9±0.11*	0.6±0.15*	0.4±0.07*
АЛТ, ед./л	7-15	52.7±1.23	14.2±1.54*	15.9±1.02*	13.3±0.91*
АСТ, ед./л	8-25	34.0±2.52	19.6±1.95*	21.9±2.05*	17.7±1.07*
Коэффициент Де Ритиса	1.3-1.4	0.7±0.12	1.4±0.04**	1.4±0.01*	1.3±0.08*
Щелочная фосфатаза, ед/л	140-200	265.4±2.39	172.6±1.43*	183.6±4.91*	160.3±3.28*
α-Амилаза, ед./л	320-1140	2156.7±141.83	896.1±56.3*	917.6±87.1**	707.3±51.2*

Примечание: * – р < 0.05, ** – р < 0.01

Коэффициент Де Ритиса (АСТ/АЛТ) снизился в первой и во второй опытной группах в два раза, в третьей – в 2.1 раза по сравнению с контролем. Следовательно, под влиянием препаратов стрептобифид, ветом 3 и интествит печени поросят происходит нормализация репаративных процессов.

Количество щелочной фосфатазы снизилась в первой опытной группе на

53.5%, во второй и третьей – на 44.6 и 65.6% соответственно, однако оставалась высокой в контрольной группе.

После проведенной терапии было отмечено восстановление ферментативной активности поджелудочной железы. В группе, где применяли стрептобифид, показатели α-амилазы снизились в 2.5 раза, там, где использовали ветом 3 – в 2.4 раза. Однако наибольшим коррекционным действием активности поджелудочной железы обладало применение интестевита. Так, показатель α-амилазы в третьей опытной группе достоверно снизился в 3 раза (p<0.05) в сравнении с контролем.

О восстановительных процессах в печени и поджелудочной железе и

стимуляции их функций при применении пробиотических препаратов в большей степени говорит снижение количества щелочной фосфатазы, α-амилазы, нормализация коэффициента Де Ритиса (АСТ/АЛТ) в сыворотке крови, а также снижение количества билирубиновых фракций и глюкозы до физиологических пределов.

Материал взят из: Научно-практический журнал “Вестник ИрГСХА” Выпуск 57

Источник