Общий анализ крови ручным методом

Общий анализ крови ручным методом thumbnail

Министерство здравоохранения
Амурской области

Государственное автономное учреждение
амурской области профессиональная
образовательная организация

«амурский медицинский колледж»

методическая
разработка практического занятия

для студентов

ПМ.02 Проведение лабораторных
гематологических исследований

МДК 02.01. Теория и практика
лабораторных гематологических
исследований

специальность
31.02.03 Лабораторная диагностика

квалификация
Медицинский технолог

Занятие №1

Тема:
Взятие крови из пальца для выполнения
клинического анализа ручным методом.

Благовещенск -2014

Рассмотрено

на заседании ЦМК спец. дисциплин

«Лабораторная диагностика»

Протокол №________

«_____»___________________2014 г.

Председатель ЦМК

Маятникова Н.И. _______________

Утверждаю

Зам. директора по НМР

М.А. Сидоренко___________________

«_____»____________________2014
г.

Методическая разработка
практического занятия для студентов
разработана в соответствии с Рабочей
программой профессионального модуля
ПМ.02 Проведение лабораторных
гематологических исследований
междисциплинарного курса
МДК 02.01. Теория и практика лабораторных
гематологических исследований
и
требованиям ФГОСпоспециальности
31.02.03 Лабораторная диагностика
по
профессии «Медицинский
технолог».

Организация-разработчик: ГАУ АО
ПОО «Амурский медицинский колледж».

Разработчик:

Стринадко Татьяна Валерьевна,
кандидат биологических наук, преподаватель
ГАУ АО ПОО «Амурский медицинский колледж»
I квалификационной категории.

Методическая разработка цикла
практических занятий для преподавателя
рассмотрена на заседании ЦМК специальных
дисциплин, и рекомендована к использованию
при обучении студентов медицинского
колледжа.

Список используемой литературы.

  1. Г.Е. Ройтберг, А.В. Струтынский
    Лабораторная и инструментальная
    диагностика заболеваний внутренних
    органов. On-lain
    медицинский справочник.

  2. Методы клинических лабораторных
    исследований / под ред. проф. В.С.
    Камышникова. – 4-изд. – М.: МЕДпресс-информ,
    2011. – 752 с.:ил.

    Занятие № 1.

    Тема: Взятие
    крови из пальца для выполнения клинического
    анализа ручным методом.

    Цель: Научиться брать кровь
    из пальца.

    Задачи:

    Студенты должны знать:

    1. Как готовить реактивы для взятия
      крови из пальца.

    2. Правила подготовки больного к
      взятию крови из пальца.

    3. Порядок взятия крови на
      исследования.

    4. Какие могут возникнуть ошибки
      при взятии крови из пальца.

    Студенты должны уметь:

    1. Готовить оборудование и реактивы
      для взятия крови из пальца.

    2. Готовить укладку лаборанта.

    3. Брать
      кровь из пальца на различные исследования.

    Оснащение занятия:

    1. Наглядные пособия:

      • объемные пособия (коллекция
        препаратов крови);

      • печатные пособия (методическая
        разработка практического занятия для
        преподавателя, методическая разработка
        практического занятия для студентов);

      • проекционный материал
        (презентация).

    2. Технические средства обучения:

    • Мультимедиа

    3. Специальное оборудование:

    • Лабораторная посуда

    • Аппарат Панченкова

    1. Реактивы:

    • Набор реактивов для определения
      гемоглобина

    • 5% цитрат натрия

    • Физиологический раствор

    • 3% уксусная кислота

    Место проведения занятия:

    Кабинет МКЛИ

    Рекомендуемая литература:

    Основная:

    1. конспект лекций.

    1. Методы клинических лабораторных
      исследований / под ред. проф. В.С.
      Камышникова. – 4-изд. – М.: МЕДпресс-информ,
      2011. – 752 с.:ил.

    1. Дополнительная:

    • Методики клинических лабораторных
      исследований. Справочное пособие. В
      3-х т. Под ред. В.В. Меньшикова. – М.,
      Лабора. 2008. – 448 с.

    • Г.Е. Ройтберг, А.В. Струтынский
      Лабораторная и инструментальная
      диагностика заболеваний внутренних
      органов. On-lain
      медицинский справочник.

    Задание №1.
    Прочтите и законспектируйте:

    Правила взятия крови.

    Исследование рекомендуется
    проводить утром натощак или через 1 час
    после легкого завтрака. Кровь для
    проведения общего клинического анализа
    берут у пациента из обычно из мякоти IV
    пальца руки, вены или из мочки уха, а у
    новорожденных — из пятки. Не рекомендуется
    брать кровь после физической и умственной
    нагрузки, применения медикаментов,
    особенно при внутривенном или
    внутримышечном их введении, воздействия
    рентгеновских лучей и после
    физиотерапевтических процедур. В
    экстренных случаях этими правилами
    пренебрегают. Оптимальной является
    следующая последовательность взятия
    крови для исследования:

    • кровь для определения СОЭ;

    • кровь
      для определения концентрации гемоглобина;

    • кровь
      для подсчета эритроцитов;

    • кровь
      для подсчета общего количества
      лейкоцитов;

    • кровь
      для приготовления мазка и исследования
      лейкоцитарной формулы.

    Задание №2.
    Приготовьте
    реактивы, необходимые для взятия крови
    из пальца:

    • Раствор натрия хлористого (готов
      к использованию),

    • Кислота уксусная 3
      % (сделать навеску 3 гр. уксусной кислоты,
      добавить дистиллированной воды до 100
      мл),

    • Цитрат натрия 5 % (сделать навеску
      из 5 гр. лимонной кислоты, добавить
      дистиллированной воды до 100 мл),

    • Набор реагентов для определения
      гемоглобина гемихромным методом
      (Гемоглобин – Ново, Вектор Бест).
      Содержимое флакона с реагентом
      (100-кратный концентрат раствора натрия
      додецилсульфата) количественно перенести
      в мерную колбу вместимостью 1000 мл, объем
      раствора довести до метки дистиллированной
      водой, перемешать, избегая вспенивания.

    Задание №3.
    Организуйте рабочее место для взятия
    крови из пальца:

    На рабочем месте при взятии крови
    выделяют 3 зоны:

    • чистую (стерильную),

    • рабочую

    • грязную.

    В чистой зоне располагаются:

    — стерильные инструменты,
    стерильная вата, стерильный пинцет

    — одноразовые скарификаторы

    — стерильные предметные стекла

    — стерильные капилляры Панченкова

    — стерильный 5% раствор лимоннокислого
    (цитрата) натрия

    — стерильные резиновые перчатки

    В грязной зоне располагаются:

    — дезинфицирующие растворы для
    обработки поверхностей (6% р-р перекиси
    водорода, 0,6% р. гипохлорида кальция и
    др.)

    — емкость с ватными тампонами
    для перчаток

    — емкости накопители – контейнеры
    для отходов: использованной ваты,
    скарификаторов, капилляров

    — контейнер для использованных
    перчаток

    В рабочей зоне располагаются:

    — 70% р-р этилового спирта

    — штатив с пробирками для взятия
    крови на СОЭ, эритроциты, гемоглобин,
    лейкоциты

    — планшет для взятия крови — чашка
    Петри со шлифованным стеклом для
    изготовления мазка крови

    — емкость для приготовленных
    мазков крови.

    Задание №4.
    Приготовьте укладку для лаборанта:

    Общий анализ крови ручным методом

    рис. 1. укладка для лаборанта.

    Укладка для лаборанта служит
    для упрощения забора крови.

    В
    комплект входит:

    1. Штатив
      пластиковый на 40 гнезд; 1 шт.

    2. Пробирки
      14х120 мм; 10 шт.

    3. Карандаш
      по стеклу 1 шт.

    4. Капилляр
      Сали 1 шт.

    5. Емкость
      для отработанного материала 2 шт.

    6. Скарификатор
      10 шт.

    7. Стекло
      предметное с лункой 1 шт.

    8. Стекло
      для растяжки мазков 1 шт.

    9. Стекло
      предметное 10 шт.

    10. Баллон
      — каплесчитатель № «0»; 1 шт.

    11. капилляр
      Панченкова

    12. спирт
      70º

    13. стерильные
      ватные шарики

    14. стерильные
      пипетки вместимостью 0,02

    дополнительно
    приготовить:

    1. аппарат
      Панченкова

    Задание
    №5.
    Разлейте реактивы
    по пробиркам:

    1. Для
      подсчета эритроцитов пробирку заполнить
      4,0 мл раствора изотонического раствора
      натрия хлорида.

    2. Для
      подсчета числа лейкоцитов, пробирку
      заполнить 0,4 мл 3–5%-ного раствора
      уксусной кислоты;

    3. Для
      определения количества гемоглобина
      пробирку заполнить 5,0 мл рабочего
      реагента.

    Читайте также:  В общем анализе крови повышены эритроциты что

    Общий анализ крови ручным методом

    Рис. 2. Схема разведения крови
    для определения гемоглобина (а), подсчета
    числа эритроцитов (б) и общего числа
    лейкоцитов (в)

    Задание
    №6.
    Сделайте прокол
    пальца и наберите кровь:

    Не следует брать кровь из
    воспаленных или поврежденных участков.
    Если место предполагаемого прокола
    холодное или цианотическое, его
    предварительно согревают массированием.
    В момент взятия крови из пальца пациент
    должен сидеть или лежать. Кожу мякоти
    ногтевой фаланги IV пальца левой руки
    протирают ватным шариком, смоченным
    спиртом и прокалывают индивидуальным
    стерильным скарификатором. Укол следует
    делать быстрым коротким движением до
    упора, одновременно фиксируя пальцами
    левой руки концевую фалангу IV пальца
    пациента и слегка надавливая кожу.
    Первую каплю крови вытирают сухим ватным
    шариком. Из следующих капель крови при
    легком надавливании быстро набирают
    необходимое количество крови.

    Взять
    кровь
    для определения
    СОЭ
    :

    Капилляр Панченкова,
    предварительно заполненный 5% раствором
    натрия цитрата до метки “75”, промывают
    этим реактивом, выдувая его на дно
    пробирки Видаля. Затем тем же капилляром
    насасывают кровь до метки “0” (100 мм).
    Капилляр заполняют кровью постепенно,
    по мере появления новых капель крови в
    месте укола. После этого мякоть пальца
    вытирают сухим ватным шариком, а кровь
    из капилляра выдувают в пробирку с
    цитратом и тщательно встряхивают ее.
    Следует помнить, что соотношение натрия
    цитрата и крови в пробирке должно быть
    равным точно 1:4. Затем вновь насасывают
    смесь натрия цитрата и крови в капилляр
    Панченкова до метки “0” и устанавливают
    его в специальный штатив, располагая
    между двумя резиновыми прокладками.
    Общий анализ крови ручным методомОбщий анализ крови ручным методом

    Рис. 4. установка капилляров в
    аппарат Панченкова.

    Взять кровь для определения
    содержания гемоглобина.

    Берут сухую стерильную пипетку
    вместимостью 0,02 мл и насасывают в нее
    кровь до этой метки. Затем кровь выдувают
    в пробирку с трансформирующим раствором
    и несколько раз ополаскивают пипетку
    этим раствором. Место укола снова
    вытирают сухим ватным тампоном.

    Взять кровь для подсчета
    эритроцитов.

    Кровь из пальца набирают в пипетку
    до метки 0,02 мл и выдувают ее в пробирку
    с 4,0 мл изотонического раствора натрия
    хлорида, несколько раз промывая пипетку
    этим раствором. Таким образом, получают
    разведение крови в 200 раз.

    Взять кровь для
    подсчета
    общего числа лейкоцитов:

    Снова набирают кровь в пипетку
    до метки 0,02 мл и выдувают ее в пробирку
    Видаля, заполненную 0,4 мл раствора
    уксусной кислоты, гемолизирующей
    эритроциты. Таким образом, получают
    разведение крови в 20 раз.

    Сделать мазки крови для
    исследования лейкоцитарной формулы:

    Каплю крови наносят
    на сухое предметное стекло. Шлифовальное
    стекло устанавливают под углом 45° к
    предметному. Кровь при соприкосновении
    со шлифовальным стеклом растекается
    по его краю. После этого быстрым движением
    шлифовальное стекло продвигают вперед,
    скользя по поверхности предметного
    стекла. При этом кровь тонким равномерным
    слоем размазывается по предметному
    стеклу. Мазок должен
    занимать 2/3 поверхности предметного
    стекла, иметь четкие границы и заканчиваться
    «щеточкой» («метелочкой»).
    Толщина мазка зависит от величины угла
    между стеклами: чем острее угол, тем
    тоньше мазок. Правильно приготовленный
    мазок имеет желтоватый цвет и одинаковую
    толщину по всей поверхности.

    Нельзя сильно нажимать на стекло,
    так как это может привести к повреждению
    форменных элементов крови. Хорошо
    приготовленный мазок крови выглядит
    на просвет желтоватым, равномерным и
    прозрачным. В этом случае форменные
    элементы крови располагаются в нем в
    один слой.

    Общий анализ крови ручным методом

    рис. 4. техника приготовления
    мазка крови.

    Задание №6.
    ответьте на следующие вопросы для
    контроля усвоения темы:

      1. Какое оборудование требуется
        для того, чтобы взять кровь из пальца?

      2. Что
        такое укладка лаборанта?

      3. Что
        входит в укладку лаборанта?

      4. Какие
        существуют правила подготовки пациента
        для взятия крови из пальца?

      5. Перечислите
        последовательность взятия крови на
        исследование.

      6. Как
        правильно сделать прокол пальца?

      7. Как
        взять кровь для определения СОЭ?

      8. Как
        взять кровь для подсчета эритроцитов?

      9. Как
        взять кровь для подсчета лейкоцитов?

      10. Как
        взять кровь для определения гемоглобина?

      11. Как
        сделать мазок крови?

      12. Назовите
        признаки хорошо приготовленного мазка.

    Задание на дом:

    1. Выучить конспект лекции.

    2. Методы клинических лабораторных
      исследований / под ред. проф. В.С.
      Камышникова. – 4-изд. – М.: МЕДпресс-информ,
      2011. – 752 с.:ил.

    Вопросы для подготовки:

    1. Ошибки, которые могут возникнуть
      при взятии крови.

    2. Организация рабочего места
      лаборанта, приготовление посуды,
      оборудования, реактивов. Укладка
      лаборанта.

    3. Правила подготовки пациента к
      исследованию.

    4. Последовательность взятия крови
      на различные исследования.

    5. Признаки хорошо приготовленного
      мазка.

    6. Приказы и инструкции Министерства
      здравоохранения РБ по профилактике
      сывороточного гепатита и СПИД в ЛПУ, у
      медицинского персонала, занятого
      забором и исследованием крови.

    7. Утилизация капиллярной крови,
      дезинфекция и стерилизация использованной
      лабораторной посуды, инструментария,
      средств защиты.

    Источник

    Общий клинический анализ крови – это самый распространенный диагностический тест, который назначает пациенту врач. За последние десятилетия технология этого рутинного, но очень информативного исследования проделала колоссальный рывок – она стала автоматической. В помощь врачу лабораторной диагностики, орудием труда которого был обычный световой микроскоп, пришли высокотехнологичные автоматические гематологические анализаторы.

    В этом посте мы расскажем, что именно происходит внутри «умной машины», видящей нашу кровь насквозь, и почему ей следует верить. Мы будем рассматривать физику процессов на примере гематологического анализатора UniCel DxH800 мирового бренда Beckman Coulter. Именно на этом оборудовании выполняются исследования, заказанные в сервисе лабораторной диагностики LAB4U.RU. Но для того, чтобы понять технологию автоматического анализа крови, мы разберемся с тем, что видели врачи-лаборанты под микроскопом и как они интерпретировали эту информацию.

    Параметры анализа крови

    Итак, в крови содержится три вида клеток:

    • лейкоциты, обеспечивающие иммунную защиту;
    • тромбоциты, отвечающие за свертываемость крови;
    • эритроциты, осуществляющие транспорт кислорода и углекислого газа.

    Эти клетки находятся в крови в совершенно определенных количествах. Их обуславливают возраст человека и состояние его здоровья. В зависимости от условий, в которых находится организм, костный мозг производит столько клеток, сколько их требуется организму. Поэтому, зная количество определенного вида клеток крови и их форму, размер и другие качественные характеристики, можно уверенно судить о состоянии и текущих потребностях организма. Именно эти ключевые параметры – количество клеток каждого вида, их внешний вид и качественные характеристики – составляют общий клинический анализ крови.

    Читайте также:  Белок в моче биохимический анализ крови

    При проведении общего анализа крови производят подсчет количества эритроцитов, тромбоцитов и лейкоцитов. С лейкоцитами сложнее: их несколько видов, и каждый вид выполняет свою функцию. Выделяют 5 разных видов лейкоцитов:

    1. нейтрофилы, нейтрализующие в основном бактерии;
    2. эозинофилы, нейтрализующие иммунные комплексы антиген-антитело;
    3. базофилы, участвующие в аллергических реакциях;
    4. моноциты – главные макрофаги и утилизаторы;
    5. лимфоциты, обеспечивающие общий и местный иммунитет.

    В свою очередь, нейтрофилы по степени зрелости разделяют на:

    • палочкоядерные,
    • сегментоядерные,
    • миелоциты,
    • метамиелоциты.

    Процент каждого вида лейкоцитов в их общем объеме называют лейкоцитарной формулой, которая имеет важное диагностическое значение. Например, чем более выражен бактериальный воспалительный процесс, тем больше нейтрофилов в лейкоцитарной формуле. Наличие нейтрофилов разной степени зрелости говорит о тяжести бактериальной инфекции. Чем острее процесс, тем больше в крови палочкоядерных нейтрофилов. Появление в крови метамиелоцитов и миелоцитов говорит о крайне тяжелой бактериальной инфекции. Для вирусных заболеваний характерно увеличение лимфоцитов, при аллергических реакциях – увеличение эозинофиллов.

    Помимо количественных показателей, крайне важна морфология клеток. Изменение их обычной формы и размеров также свидетельствует о наличии определенных патологических процессов в организме.

    Важный и наиболее известный показатель – количество в крови гемоглобина – сложного белка, обеспечивающего поступление кислорода к тканям и выведение углекислого газа. Концентрация гемоглобина в крови – главный показатель при диагностике анемий.

    Еще один из важных параметров – это скорость оседания эритроцитов (СОЭ). При воспалительных процессах у эритроцитов появляется свойство слипаться друг с другом, образуя небольшие сгустки. Обладая большей массой, слипшиеся эритроциты под действием силы тяжести оседают быстрее, чем одиночные клетки. Изменение скорости их оседания в мм/ч является простым индикатором воспалительных процессов в организме.

    Как было: скарификатор, пробирки и микроскоп

    Забор крови

    Вспомним, как раньше сдавали кровь: болезненный прокол подушечки скарификатором, бесконечные стеклянные трубочки, в которые собирали драгоценные капли выжатой крови. Как лаборант одним стёклышком проводил по другому, где находилась капля крови, царапая на стекле номер простым карандашом. И бесконечные пробирки с разными жидкостями. Сейчас это уже кажется какой-то алхимией.

    Кровь брали именно из безымянного пальца, на что были вполне серьезные причины: анатомия этого пальца такова, что его травмирование дает минимальную угрозу сепсиса в случае инфицирования ранки. Забор крови из вены считался куда более опасным. Поэтому анализ венозной крови не был рутинным, а назначался по необходимости, и в основном в стационарах.

    Стоит отметить, что уже на этапе забора начинались значительные погрешности. Например, разная толщина кожи дает разную глубину укола, вместе с кровью в пробирку попадала тканевая жидкость – отсюда изменение концентрации крови, кроме того, при давлении на палец клетки крови могли разрушаться.

    Помните ряд пробирок, куда помещали собранную из пальца кровь? Для подсчета разных клеток действительно нужны были разные пробирки. Для эритроцитов – с физраствором, для лейкоцитов – с раствором уксусной кислоты, где эритроциты растворялись, для определения гемоглобина – с раствором соляной кислоты. Отдельный капилляр был для определения СОЭ. И на последнем этапе делался мазок на стекле для последующего подсчета лейкоцитарной формулы.

    Анализ крови под микроскопом

    Для подсчета клеток под микроскопом в лабораторной практике использовался специальный оптический прибор, предложенный еще в ХIX веке русским врачом, именем которого этот прибор и был назван – камера Горяева. Она позволяла определить количество клеток в заданном микрообъеме жидкости и представляла собой толстое предметное стекло с прямоугольным углублением (камерой). На нее была нанесена микроскопическая сетка. Сверху камера Горяева накрывалась тонким покровным стеклом.

    Эта сетка состояла из 225 больших квадратов, 25 из которых были разделены на 16 малых квадратов. Эритроциты считались в маленьких исчерченных квадратах, расположенных по диагонали камеры Горяева. Причем существовало определенное правило подсчета клеток, которые лежат на границе квадрата. Расчет числа эритроцитов в литре крови осуществлялся по формуле, исходя из разведения крови и количества квадратов в сетке. После математических сокращений достаточно было посчитанное количество клеток в камере умножить на 10 в 12-й степени и внести в бланк анализа.

    Лейкоциты считали здесь же, но использовали уже большие квадраты сетки, поскольку лейкоциты в тысячу раз больше, чем эритроциты. После подсчета лейкоцитов их количество умножали на 10 в 9-й степени и вносили в бланк. У опытного лаборанта подсчет клеток занимал в среднем 3-5 мин.

    Методы подсчета тромбоцитов в камере Горяева были очень трудоемки из-за малой величины этого вида клеток. Оценивать их количество приходилось только на основе окрашенного мазка крови, и сам процесс был тоже весьма трудоемким. Поэтому, как правило, количество тромбоцитов рассчитывали только по специальному запросу врача.

    Лейкоцитарную формулу, то есть процентный состав лейкоцитов каждого вида в общем их количестве мог определять только врач – по результатам изучения мазков крови на стеклах.

    Визуально определяя находящиеся в поле зрения различные виды лейкоцитов по форме их ядра, врач считал клетки каждого вида и общее их количество. Насчитав 100 в совокупности, он получал требуемое процентное соотношение каждого вида клеток. Для упрощения подсчета использовались специальные счетчики с отдельными клавишами для каждого вида клеток.

    Примечательно, что такой важный параметр, как гемоглобин, определялся лаборантом визуально (!) по цвету гемолизированной крови в пробирке с соляной кислотой. Метод был основан на превращении гемоглобина в солянокислый гематин коричневого цвета, интенсивность окраски которого пропорциональна содержанию гемоглобина. Полученный раствор солянокислого гематина разводили водой до цвета стандарта, соответствующего известной концентрации гемоглобина. В общем, прошлый век

    Читайте также:  Клинический анализ крови нормальные показатели женщины

    Как стало: вакуумные контейнеры и гематологические анализаторы

    Начнем с того, что сейчас полностью поменялась технология забора крови. На смену скарификаторам и стеклянным капиллярам с пробирками пришли вакуумные контейнеры. Использующиеся теперь системы забора крови малотравматичны, процесс полностью унифицирован, что значительно сократило процент погрешностей на этом этапе. Вакуумные пробирки, содержащие консерванты и антикоагулянты, позволяют сохранять и транспортировать кровь от точки забора до лаборатории. Именно благодаря появлению новой технологии стало возможным сдавать анализы максимально удобно – в любое время, в любом месте.

    На первый взгляд, автоматизировать такой сложный процесс, как идентификация клеток крови и их подсчет, кажется невозможно. Но, как обычно, все гениальное просто. В основе автоматического анализа крови лежат фундаментальные физические законы. Технология автоматического подсчета клеток была запатентована в далеком 1953 году американцами Джозефом и Уолессом Культерами. Именно их имя стоит в название мирового бренда гематологического оборудования Bеckman&Coulter.

    Подсчет клеток

    Апертурно-импедансный метод (метод Культера или кондуктометрический метод) основан на подсчете количества и оценке характера импульсов, возникающих при прохождении клетки через отверстие малого диаметра (апертуру), по обе стороны которого расположены два электрода. При прохождении клетки через канал, заполненный электролитом, возрастает сопротивление электрическому току. Каждое прохождение клетки сопровождается появлением электрического импульса. Чтобы выяснить, какова концентрация клеток, необходимо пропустить через канал определенный объем пробы и сосчитать количество появившихся импульсов. Единственное ограничение – концентрация пробы должна обеспечивать прохождение через апертуру только одной клетки в каждый момент времени.

    За прошедшие более 60 лет технология автоматического гематологического анализа прошла большой путь. Вначале это были простые счетчики клеток, определяющие 8-10 параметров: количество эритроцитов (RBC), количество лейкоцитов (WBC), гемоглобин (Hb) и несколько расчетных. Такими были анализаторы первого класса.

    Второй класс анализаторов определял уже до 20 различных параметров крови. Они существенно выше по уровню в дифференциации лейкоцитов и способны выделять популяции гранулоцитов (эозинофилы + нейтрофилы + базофилы), лимфоцитов и интегральной популяции средних клеток, куда относились моноциты, эозинофилы, базофилы и плазматические клетки. Такая дифференциация лейкоцитов успешно использовалась при обследовании практически здоровых людей.

    Самыми технологичными и инновационными анализаторами на сегодняшний день являются машины третьего класса, определяющие до сотни различных параметров, проводящие развернутое дифференцирование клеток, в том числе по степени зрелости, анализирующие их морфологию и сигнализирующие врачу-лаборанту об обнаружении патологии. Машины третьего класса, как правило, снабжены еще и автоматическими системами приготовления мазков (включая их окраску) и вывода изображения на экран монитора. К таким передовым гематологическим системам относятся оборудование BeckmanCoulter, в частности система клеточного анализа UniCel DxH 800.

    Современные аппараты BeckmanCoulter используют метод многопараметрической проточной цитометрии на основе запатентованной технологии VCS (Volume-Conductivity-Scatter). VCS-технология подразумевает оценку объема клетки, ее электропроводимость и светорассеяние.

    Первый параметр – объем клетки – измеряется с использованием принципа Культера на основе оценки сопротивления при прохождении клеткой апертуры при постоянном токе. Величину и плотность клеточного ядра, а также ее внутренний состав определяют с помощью измерения ее электропроводности в переменном токе высокой частоты. Рассеяние лазерного света под разными углами позволяет получить информацию о структуре клеточной поверхности, гранулярности цитоплазмы и морфологии ядра клетки.

    Полученные по трем каналам данные комбинируются и анализируются. В результате клетки распределяются по кластерам, включая разделение по степени зрелости эритроцитов и лейкоцитов (нейтрофилов). На основе полученных измерений этих трех размерностей определяется множество гематологических параметров – до 30 в диагностических целях, более 20 в исследовательских целях и более ста специфичных расчетных параметров для узкоспециализированных цитологических исследований. Данные визуализируются в 2D- и 3D-форматах. Врач-лаборант, работающий с гематологическим анализатором BackmanCoulter, видит результаты анализа на мониторе примерно в таком виде:

    А далее принимает решение – надо ли их верифицировать или нет.

    Стоит ли говорить, что информативность и точность современного автоматического анализа во много раз выше мануального? Производительность машин подобного класса – порядка сотни образцов в час при анализе тысяч клеток в образце. Вспомним, что при микроскопии мазка врачом анализировалось только 100 клеток!

    Однако несмотря на эти впечатляющие результаты, именно микроскопия до сих пор пока остается «золотым стандартом» диагностики. В частности, при выявлении аппаратом патологической морфологии клеток образец анализируется под микроскопом вручную. При обследовании больных с гематологическими заболеваниями микроскопия окрашенного мазка крови проводится только вручную опытным врачом-гематологом. Именно так, вручную, дополнительно к автоматическому подсчету клеток, выполняется оценка лейкоцитарной формулы во всех детских анализах крови по заказам, сделанным с помощью лабораторного онлайн-сервиса LAB4U.RU.

    Вместо резюме

    Технологии автоматизированного гематологического анализа продолжают активно развиваться. По существу они уже заменили микроскопию при выполнении рутинных профилактических анализов, оставив ее для особо значимых ситуаций. Мы имеем в виду детские анализы, анализы людей, имеющих подтвержденные заболевания, особенно гематологические. Однако в обозримом будущем и на этом участке лабораторной диагностики врачи получат аппараты, способные самостоятельно выполнять морфологический анализ клеток с использованием нейронных сетей. Снизив нагрузку на врачей, они в то же время повысят требования к их квалификации, поскольку в зоне принятия решений человеком останутся только нетипичные и патологические состояния клеток.

    Количество информативных параметров анализа крови, увеличившиеся многократно, поднимает требования к профессиональной квалификации и врача-клинициста, которому необходимо анализировать сочетания значений массы параметров в диагностических целях. На помощь врачам этого фронта идут экспертные системы, которые, используя данные анализатора, предоставляют рекомендации по дальнейшему обследованию пациента и выдают возможный диагноз. Такие системы уже представлены на лабораторном рынке. Но это уже тема отдельной статьи.

    Источник