Общий анализ крови алгоритм выполнения

Работа добавлена на сайт samzan.ru: 2015-07-05

Билет №13

1.  АЛГОРИТМ ПРОВЕДЕНИЯ ОБЩЕГО АНАЛИЗА КРОВИ

1. Подготовка  рабочего места для исследования.

      На двоих студентов  для забора       крови  должны быть подготовлены:

Реактивы: 

1.  спирт этиловый  70%;
2.  5% раствор цитрата натрия;   
3.  физраствор,             
4.  трансформирующий раствор;  
5.  5% раствор уксусной кислоты.

Оборудование:  вата;         стерильные скарификаторы; стерильные              капилляры Панченкова; капилляры       Сали; предметные стекла с лункой;              предметные стекла; шлифованное стекло;      штатив с  пробирками;              штатив       Панченкова;  градуированные пипетки;      резиновые груши;              емкости с       дезраствором для использованной ваты,      капилляров,              скарификаторов.

2. Подготовительная работа

1.  Промывают капилляр Панченкова  5% раствором цитрата натрия.
2.  Набирают  цитрат натрия в капилляр Панченкова до метки «75»    и выдувают

    его в лунку предметного стекла (или в пробирку).

1.  Разливают реактивы по пробиркам: в одну пробирку вносят 4мл  физраствора; в другую — 5мл трансформирующего раствора; в третью — 0,4 мл 5% раствора уксусной кислоты.

3. Забор крови из пальца

1.  Делают прокол кожи.
2.  После удаления первой капли  делают 2 мазка.
3.  Набирают из пальца кровь в капилляр Панченкова  выше  метки «0» («К») – почти полный капилляр.
4.  Спускают кровь из капилляра Панченкова  до метки О «К»  на предметное

    стекло – она будет использована для определения содержания гемоглобина,

    подсчета количества эритроцитов и лейкоцитов.

1.  Остальную кровь из капилляра Панченкова  спускают в цитрат натрия и

    тщательно перемешивают кровь с цитратом.

1.  Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови и вносят её в физраствор – для подсчета эритроцитов.
2.  2-3 промывают капилляр Сали физраствором.
3.  Перемешивают кровь с физраствором.
4.  Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови  и вносят её в трансформирующий раствор – для определения концентрации гемоглобина.
5.  2-3 промывают капилляр Сали трансформирующим раствором.
6.  Тщательно перемешивают содержимое пробирки и замечают  время – 20

     минут.

1.  Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови  и вносят её в  раствор уксусной кислоты – для подсчета количества лейкоцитов.
2.  2-3 промывают капилляр Сали  раствором уксусной кислоты.
3.  Тщательно перемешивают содержимое пробирки.
4.  Набирают смесь крови с цитратом в капилляр Панченкова без пузырьков воздуха до метки «0» и ставят капилляр в штатив Панченкова на 1 час.

4. Проведение исследований

1.  Через 20 минут колориметрируют  смесь крови с трансформирующим раствором  на ФЭКе  или  МИНИГЕМе.
2.  При использовании  ФЭКа  концентрацию гемоглобина определяют по калибровочному графику.
3.  Готовят к работе  счетную камеру  – притирают к камере Горяева покровное стекло так, чтобы появились радужные кольца.
4.  Тщательно встряхивают  пробирки с кровью, разведенной физраствором и уксусной кислотой.
5.  Заполняют одну сетку камеры Горяева  смесью крови и физраствора (для подсчета  эритроцитов), а другую – кровью с уксусной кислотой (для подсчета лейкоцитов).
6.  Оставляют камеру в горизонтальном положении на 1 минуту для оседания клеток крови.
7.  Готовят микроскоп к работе: настраивают свет, конденсор опускают.
8.  Подсчитывают под микроскопом  (окуляр 10х или 15, объектив 8х)  в одной сетке камеры Горяева  эритроциты в пяти больших разграфленных квадратах по диагонали сетки, а затем, в другой сетке счетной камеры — лейкоциты в 100 больших не разграфленных квадратах.
9.  По формулам рассчитывают  количество эритроцитов и лейкоцитов в 1л крови
10.  Через 1 час снимают  показания СОЭ.

2. Определите количество белка в моче пиррогаллоловым методом. Принцип метода, реактивы, ход определения,  расчет.

Ответ:
Принцип: При взаимодействии белка с красителем пирогаллоловым красным образуется окрашенный комплекс, интенсивность поглощения которого на длине волны 600нм увеличивается с ростом концентрации белка в пробе.                                                  

Реактивы поставляются в наборе: раствор пирогаллолового красного и молибдата натрия в сукцинатном буфере, калибровочные растворы белка 1 г/л  и 0,2г/л.

Специальное оборудование: фотоэлектроколориметр или специальный фотометр МИКРОЛАБ-600 для определения концентрации белка.

Ход исследования. Приготовить пробы смешиванием компонентов в количестве, указанном в таблице 7.

Приготовление проб

После смешивания компонентов пробы инкубируют 15 минут при комнатной температуре. Окраска стабильна в течении 30 минут после завершения инкубирования. Измеряют оптическую плотность опытных проб и калибровочной пробы в кюветах на 1см при длине волны 600нм против холостой пробы.

Расчет ведут по формуле:

C=Dобразец   ,    где С – концентрация белка в пробе,

    Dстандарт               D – образец- оптическая плотность опытной пробы

                                      D – стандарт-оптическая плотность калибровочной пробы.

Если результат определения более 1,9г/л, следует развести исследуемый образец в 2 или более раза дистиллированной водой, повторить тест и результат умножить на степень разведения. Если концентрация белка менее 0,07г/л и требуется уточнение результата, повторить анализ с калибровочной пробой 0,2г/л при соотношении образец/реагент=1:10

3. У больного после приступа удушья выделилось небольшое количество слизистой мокроты.  

1.  Перечислите отклонения от нормы в анализе.
2.  Патология, для которой  характерна такая картина
3.  Признаки, указывающие на данную патологию

Ответ:

—  Бронхиальная астма.

—  Характеристика мокроты:

1.  слизистый характер, стекловидная, вязкая;
2.  при микроскопии обнаружены эозинофилы, эпителиальные клетки, спирали Куршмана, кристаллы Шарко-Лейдена.

Билет №14

2. Найдите в окрашенном препарате крови «бластные» клетки. Морфология «бластных» клеток. Картина крови при острых лейкозах.

Ответ:
-Бластные клетки — недифференцированные клетки.

По морфологическим, цитохимическим и иммунофенотипическим признакам бластные клетки могут быть отнесены к гранулоцитарному, лимфоидному или эритроидному ряду.

От других клеток крови и костного мозга бластные клетки отличаются строением ядра. Хроматин у них состоит из нитей равномерного калибра и окраски, благодаря чему структура ядра напоминает тонкое кружево. Другой характерный признак бластной клетки — наличие крупных ядрышек (2-5 на одну клетку).

Миелобластам и монобластам свойственны такие признаки, как азурофильные гранулы, палочки Ауэра , складчатость ядерной оболочки. 

Бластные клетки — наиболее «молодые» элементы крови.

-Картина крови и костного мозга
Для острого лейкоза типична триада признаков: лейкоцитоз, появление большого числа бластных клеток и лейкемический провал (в периферической крови присутствуют бласты и зрелые клетки белой крови, без промежуточных стадий созревания).В начале острого лейкоза может отмечаться анемия, цветовой показатель равен 1 (нормохромная анемия) или 1,2–1,3 (гиперхромная анемия). Среди эритроцитов много макроцитов. Количество тромбоцитов снижено или нормально. При остром лейкозе костный мозг содержит десятки процентов бластных клеток. Основным диагностическим признаком является однообразная картина костномозгового кроветворения. По мере прогрессирования острого лейкоза лейкозные клетки становятся более уродливыми.

3. Оцените микроскопическую картину кала:

1.  Перечислите отклонения от нормы в анализе.
2.  Патология, для которой  характерна такая картина
3.  Признаки, указывающие на данную патологию

Ответ:

1. Отклонения от нормы:

1.  переваримая клетчатка +++,
2.  крахмал +,
3.  йодофильная флора  +++ (в норме этих элементов в кале нет).

2. Бродильная диспепсия.

3. Наличие йодофильной флоры, перевар

Цель: диагностическая — взятие крови на общий клинический анализ: определение количественного и качественного состава форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов), определение количества гемоглобина в крови и скорости оседания эритроцитов (СОЭ), определение содержания в крови глюкозы, а также свертываемости крови и времени кровотечения.

Показание: по назначению врача.

Места прокола кожи: мочка уха. безымянный палец, пятка ножки новорожденного.

Приготовьте: стерильные: копье-скарификатор, ватные шарики, перчатки, кожный антисептик, 5% раствор йода, КБСУ.

Алгоритм действия:

1. Медицинская сестра накануне исследования должна предупредить пациента о предстоящем заборе крови и разъяснить, что кровь берут натощак, до приема лекарственных средств, а на ужин не следует употреблять жирную пищу.

2. Усадите удобно пациента.

3. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком, наденьте перчатки.

4. Возьмите левой рукой IV палец левой руки пациента так, чтобы ваш первый палец располагался с тыльной поверхности кисти пациента, а остальные — с ладонной.

5. Обработайте место прокола двумя стерильными ватными шариками, смоченными кожным антисептиком и дайте ему высохнуть, иначе выступившая после прокола кровь растекается по пальцу.

6. Слегка сдавите ногтевую фалангу пальца пациента и держа копье- скарификатор перпендикулярно произведите прокол влево от срединной линии, немного отступя от ногтя.

7. Разрез должен располагаться поперек кожных линий пальца, ранка будет зиять, кровь из нее пойдет легко и обильно. Разрез, расположенный вдоль кожных линий, быстро спадает. Не следует делать прокол около самого ногтя, так как кровь затекает под него и набирать ее для исследования трудно,

8. Сотрите первую каплю крови стерильным сухим ватным шариком.

9. Для каждого исследования кровь набирают из новой капли.

10. После взятия крови место прокола обработайте 5% раствором йода.

11. Использованный инструментарий поместите в КБСУ.

Примечание:

— при ожогах и обморожениях кистей рук, у лиц с утолщенной и загрубевшей кожей на пальцах, кровь можно взять с мочки уха;

— у грудных детей кровь берут из большого пальца ноги или из пятки.

ЗАБОР КРОВИ ДЛЯ БИОХИМИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ ИЗ

ВЕНЫ

Цель: диагностическая.

Показание: обследование пациента.

Осложнения: гематома, тромбофлебит, сепсис, вирусный гепатит, СПИД.

Место взятия крови: вены локтевого сгиба предплечья, кисти.

Приготовьте: стерильные: шприц однократного применения емкостью 10-20 мл. лоток, ватные шарики, салфетки, кожный антисептик, передник, маску, защитные очки, перчатки, пробирки с непромокаемыми пробками в штативе; резиновый жгут (венозную манжетку), клеенчатую подушечку, КБСУ.

Алгоритм действия:

1. Объясните пациенту цель и ход процедуры, получите согласие. Уточните, не

позавтракал ли пациент.

2. Напишите направление в лабораторию, пронумеруйте пробирку.

3. Помогите пациенту занять удобное положение.

4. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком (см. стандарт).

5. Наденьте перчатки (ем. стандарт), маску, защитные очки, передник.

6. Соберите шприц однократного применения (см. стандарт).

7. Подложите под локоть пациента клеенчатую подушечку.

8. Наложите резиновый жгут на среднюю треть плеча на салфетку или на нательное белье.

9. Завяжите жгут так, чтобы свободные концы были направлены вверх, а петля вниз.

10. Прощупайте пульс на лучевой артерии ( пульс должен быть сохранен).

11. Исследуйте вену. Найдите наиболее наполненную вену.

12. Попросите пациента несколько раз сжимать и разжимать кулак для наполнения вены, затем зажать его.

13. Обработайте перчатки кожным антисептиком.

14. Обработайте область локтевого сгиба, место инъекции последовательно двумя ватными шариками, смоченными в кожном антисептике. Третий ватный шарик держите в левой руке между IV и V пальцами.

15. Возьмите шприц в правую руку: II палец на канюле иглы, а III, IV пальцы

охватывают цилиндр сверху, I палец снизу.

16. Зафиксируйте вену ниже предполагаемого места прокола большим пальцем левой руки.

17. Снимите колпачок с иглы и пунктируйте вену, как обычно ( кулак пациента при этом сжат).

18. Потяните поршень на себя, убедитесь, что игла в вене.

19. Наберите в шприц 5-7 мл крови, левой рукой медленно оттягивая поршень на

себя.

20. Снимите жгут, кулак пациент должен разжать, быстрым движением извлеките иглу из вены.

21. Приложите ватный шарик с кожным антисептиком на место инъекции на 3-5 минуг, попросив пациента слегка согнуть руку в локтевом суставе.

22. Снимите иглу со шприца, поместите в КБСУ.

23. Выпустите кровь из шприца медленно без напора в пробирку по стенке, не допуская ее разбрызгивания.

24. Закройте пробирку непромокаемой пробкой.

25. Пробирку с кровью вместе со штативом поставьте в контейнер, плотно закройте его.

26. Помогите пациен ту вст ать или занять комфортное положение.

27. Убедитесь, что кровь не выделяется из места прокола вены, возьмите у пациента ватный шарик и поместите его в КБСУ.

28. Отправьте контейнер и направление в биохимическую лабораторию.

29. Снимите перчатки, поместите в КБСУ.

30. Вымойте и осушите руки.

Примечание:

забор крови из вены на биохимический анализ проводится утром натощак в количестве 10 мл;

забор крови.на ВИЧ и производят в любое время дня в количестве 5

мл;

— пробирка для забора крови должна быть сухой (иначе наступает гемолиз эритроцитов), химически чистой, иметь притертую резиновую пробку; запрещается проводить забор крови без шприца — только иглой (имеется опасность разбрызгивания крови);

— в направлении укажите номер пробирки, цель исследования. Ф И О, пол, возраст пациента, диагноз, отделение;

наличие безопасной системы забора крови вакутайнер (ВО УАСиГАІЫЕК) создает максимальную защиту медперсонала, обеспечивает качество забираемого материала

ЗАБОР ВЕНОЗНОЙ КРОВИ С ПОМОЩЬЮ ВАКУУМНОЙ

СИСТЕМЫ

Вакуумная система забора крови — это безопасная система забора, транспортировки и качественного анализа образцов крови. Вакутайнер — полностью закрытая вакуумная пластиковая одноразовая система для взятия крови из вены.

Состоит из трех компонентов:

1. Двусторонней иглы с клапаном безопасности.

2. Одноразового держателя.

3. Стерильных пробирок с определенным объемом вакуума.

Преимущества: безопасность, эффективность, гарантия целостности образца и воспроизводимости исследования, минимум гемолиза, минимум микросгустков, время между забором образца и его контактом с добавкой постоянное; точность соотношения объемов кровь/добавка; минимальный эффект жгута, стерильность образца.

Цель: диагностическая.

Показание: обследование пациента.

Осложнения: гематома, тромбофлебит, сепсис.

Место взятия крови: вены локтевого сгиба, предплечья, кисти.

Приготовьте: стерильные: двустороннюю иглу с клапаном безопасности, одноразовый держатель, вакуумные пробирки, ватные шарики, перчатки, лоток, кожный антисептик, жгут (венозную манжетку), клеенчатую подушечку, маску, передник, защитные очки или экран, контейнер для транспортировки пробирок, КБСУ.

Алгоритм действия:

1. Объясните пациенту цель и ход процедуры, получите согласие. Уточните, не позавтракал ли пациент.

2. Напишите направление в лабораторию.

3. Помогите пациенту занять удобное положение.

4. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком.

5. Наденьте маску и перчатки, защитные очки, передник.

6. Возьмите систему для сбора крови.

7. Проверьте герметичность упаковки и срок годности основных компонентов забора крови.

8. Вскройте упаковку.

9. Возьмите иглу, снимите защитный колпачок (при использовании 2-х сторонней иглы — снять серый защитный колпачок).

10. Вставьте иглу в иглодержатель, завинтите до упора.

11. Усадите или уложите пациента, освободив верхнюю конечность от одежды, подложив под локоть подушечку и опустив руку вниз.

12. Наложите венозную манжетку (жгут) на среднюю треть плеча на нательное белье или салфетку.

13. Прощупайте пульс на лучевой артерии (пульс должен быть сохранен).

14. Исследуйте вену. Найдите наиболее наполненную вену.

15. Попросите пациента несколько раз сжимать и разжимать кулак для наполнения вены, затем зажать его.

16. Обработайте кожным антисептиком перчатки.

17. Обработайте область локтевого сгиба, место инъекции последовательно двумя ватными шариками, смоченными кожным антисептиком, сбросьте в КБСУ. Третий ватный шарик держите в левой руке между IV и V пальцами.

18. Возьмите систему в правую руку.

19. Зафиксируйте вену ниже предполаг аемого места прокола большим пальцем левой руки.

20. Держите иглу и иглодержатель под углом 15° по отношению к руке пациента. і Введите иглу, продвигая ее по току крови на 1- 1,5 см.

21. Переложите иглодержатель в левую руку, а правой рукой вставьте пробирку в > иглодержатель до упора и обеспечьте поступление крови.

22. При поступлении крови в стерильную пробирку снимите жгут.

23. Извлеките из держателя пробирку с полученным образцом крови.

24. Перемешайте содержимое пробирки, переворачивая ее 8 — 10 раз, но невстряхивайте.

25. Вставьте в держатель следующую пробирку, при необходимости забора крови I на другие исследования.

26. Поставьте пробирку в контейнер для транспортировки крови.

27. Приложите стерильный ватный шарик к месту венепункции, извлеките иглу из г вены и снимите с иглодержателя.

28. Прижмите стерильный шарик к месту венепункции и предложите пациенту согнуть руку в локтевом суставе и подержать его 3-5 минут.

29. Промаркируйте пробирки.

30. Зарегистрируйте данные в журнале забора крови на исследование и отправьте

кровь в вакуумной пробирке в контейнере вместе с направлением в

лабораторию.

31. Снимите средства защиты и поместите в КБСУ.

32. Вымойте и осушите руки.

Примечание: введение пробирки в иглодержатель до упора обеспечивает поступление крови, т.к. игла прокалывает резиновую мембрану и заглушку крышки пробирки. Кровь проходит в пробирку, пока не компенсирует созданный вакуум. Непоступление крови — показатель прокола вены насквозь, в этих случаях необходимо потянуть иглу (не извлекая) пока кровь не поступит в пробирку.

При извлечении пробирки из иглодержателя резиновая мембрана приходит в Исходное положение, перекрывает ток крови по игле. При необходимости используют различные пробирки в зависимости от назначенных врачом тестов.