Как взять кровь на анализ из катетера
Взятие проб крови из постоянных катетеров может привести к сложностям анализа и ошибочным его результатам из-за неполного промывания места взятия. Это приводит к контаминации образца лекарственными средствами, антикоагулянтами и/или разбавлению образца крови.
Поскольку катетеры обычно промываются физиологическим раствором для уменьшения риска тромбоза, их нужно промыть этим раствором и перед взятием проб крови для диагностических исследований. Перед взятием пробы нужно удалить из катетера достаточное количество крови, чтобы быть уверенным, что проба не разбавлена и не контаминирована. Объем удаляемой крови зависит от объема «мертвого пространства» конкретного катетера.
Для исследований, кроме анализа коагуляции, кровь рекомендуется сливать в количестве двух объемов «мертвого пространства» катетера, а для исследования коагуляции — шести объемов «мертвого пространства» катетера (или 5 мл).
Таким образом, в случае, если необходимо взятие крови и на биохимические, и на коагулологические исследования, то первой всегда берется пробирка для биохимических исследований.
При взятии крови из катетера с помощью системы BD Vacutainer® используется адаптер Luer. Техника взятия крови осуществляется также, как и при использовании игл.
7. Как правильно утилизировать использованную вакуумную систему BD Vacutainer®?
Медицинские отходы очень опасны как для здоровья человека, так и для окружающей среды, и их сбор, хранение и утилизацию необходимо проводить, соблюдая установленные санитарно-эпидемиологические правила и нормы (СанПиН 2.1.7.728-99 «Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений») и инструкции, принятые в вашем лечебном учреждении.
Медицинские изделия, применяемые для взятия венозной крови, относятся к медицинским отходам классов Б (опасные отходы) и В (чрезвычайно опасные отходы), в зависимости от того, для какого исследования берется кровь.
8. Возможные трудности при взятии крови с помощью системы BD Vacutainer®
| Причина 2: В пробирку попал воздух (это возможно, если игла с присоединенной пробиркой находилась вне вены). Ваши действия: Если кровь забирается в пробирку для исследования сыворотки без наполнителей, и вас устраивает объем набранной крови, то пробу можно использовать дальше для анализа. Если кровь набирается в пробирку с антикоагулянтом, то при заборе меньшего количества крови соотношение кровь/антикоагулянт будет нарушено, и нужно повторно взять кровь в новую пробирку. | Задание для самоконтроля № 8 |
Список литературы
1. Гудер В. Г., Нарайанан С., Виссер Г., Цавта Б. Пробы: от пациента до лаборатории. Git Verlag, 2001.
2. Инструкция о соблюдении противоэпидемического режима при взятии венозной крови путем венепункции в учреждениях здравоохранения г. Москвы 2.1.3.007-02.
3. Кишкун А. А. Современные технологии повышения качества и эффективности клинической лабораторной диагностики.- М.: РАМЛД, 2005, 528 с.
4. Кишкун А. А. Оценка экономической эффективности использования одноразовых вакуум-содержащих систем для взятия крови на лабораторные анализы / Справочник заведующего КДЛ. — 2006. — N11 (ноябрь). — С. 29-34.
5. Козлов А. В. Стандартизация преаналитического этапа как осознанная необходимость.// Лабораторная диагностика/ под. ред. В. В. Долгова, О. П. Шевченко.-М.: Издательство «Реофарм», 2005 .- С.77-78.
6. Мошкин А. В., Долгов В. В. Обеспечение качества в клинической лабораторной диагностике: Практ. руковод.- М.: «Медиздат», 2004. — 216 с.
7. Обеспечение качества лабораторных исследований. Преаналитический этап. Справочное пособие (под редакцией В. В. Меньшикова), М., Юнимед-пресс, 2003, 311 стр.
8. Приказ МЗ РФ N 380 от 25 декабря 1997 «О состоянии и мерах по совершенствованию лабораторного обеспечения диагностики и лечения пациентов в учреждениях здравоохранения Российской Федерации».
9. Приказ МЗ РФ N 45 от 7 февраля 2000 г. «О системе мер по повышению качества клинических лабораторных исследований в учреждениях здравоохранения Российской Федерации».
10. Приказ МЗ РФ N 220 от 26 мая 2003 г. «Правила проведения внутрилабораторного контроля качества количественных методов клинических лабораторных исследований с использованием контрольных материалов».
11. СанПиН 2.1.7.728-99. «Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений».
12. СП 3.1.958-99. «Профилактика вирусных гепатитов. Общие требования к эпидемиологическому надзору за вирусными гепатитами».
13. Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by venipuncture; Approved Standard- Fifth edition, NCCLS H3-A5 Vol.23, No.32.
14. Procedures for the Handling and Processing of Blood Specimens; Approved Guideline — Third Edition, NCCLS H18-A3 Vol.24, No.38.
15. Single-use containers for venous blood specimen collection ISO 6710:1995.
16. Tubes and Additives for Specimen collection; Approved Standard-Fifth edition, NCCLS H1-A5 Vol.23, No.33.
17. Use of anticoagulants in diagnostic laboratory investigation. WHO/ DIL/LAB/99.1/Rev.2 2002.
Начало формы
Оценить полезность страницы: 12345 *
Конец формы
Оставить письменный отзыв
Форма отзыва не предназначена для получения консультации по личным вопросам.
Желающие получить консультацию могут задать свой вопрос после регистрации на форуме.
Просмотреть отзывы на эту страницу
Источник
Какие лабораторные показатели надо мониторнровать, когда пациент получает ППП?
Прежде чем начать ППП, надо получить лабораторные опенки функции почек, печени н нутриционного статуса. Это включает измерения концентрации натрия, калия, хлорида, диоксида углерода, глюкозы, азота мочевины крови, креатинина, магния, фосфора, холестерина, триглицеридов, общего билирубина, альбумина, преальбумина, активности Ал AT. Ac AT.
Когда начато ППП и скорость его увеличивается, надо ежедневно смотреть за уровнем электролитов, включая магний и фосфор. Нутриционные маркеры и лабораторные анализы функции печени и почек госпитализированных пациентов надо определять по крайней мере 2-3 раза в неделю. Определения сывороточной глюкозы или глюкозы в капиллярной крови надо делать каждые 4-6 ч.
Можно ли получать пробы крови из центрального венозного катетера?
В связи с повышенным риском инфекции при манипуляциях во время проведения ППП предпочтительно не получать пробы крови из центрального венозного катетера. Если все же нужно получить кровь из центрального венозного катетера, возьмите по меньшей мере 5-10 мл, чтобы избежать ошибочных результатов лабораторных анализов. Кровь для посева следует брать с периферии. Если кровь получена из центрального венозного катетера, четко обозначьте на этикетке и направлении «кровь получена из центрального венозного катетера».
Можно ли для обеспечения проходимости центрального венозного катетера использовать промывание обычными солевыми растворами?
Хотя установлена эффективность физиологического раствора для поддержания проходимости периферических катетеров, эффективность физраствора для поддержания проходимости центральных катетеров не подтверждена. Промывайте центральные венозные катетеры с достаточным количеством гепарина, чтобы заполнить катетер. Обычно это требует от 0,5 до 1,0 мл раствора для временных катетеров и от 1,0 до 5,0 мл для более длинных тун пел про ванных катетеров. Схемы разведения и ча->та промывания гепарином варьируются. Разведение гепарина для промывания центрального венозного катетера составляет от 100 до 1000 единиц/мл. Временные катетеры обычно требуют промывки гепарином 3-4 раза в день. Туннелированные катетеры, в зависимости от конструкции, можно промывать 1-2 раза в неделю или даже в месяц (катетеры Грошонг — Groshong cateters). Вживленные порты следует промывать ежемесячно. Чтобы избежать взаимодействия лекарств, всегда промывайте катетер после введения лекарства сначала физраствором, а затем гепарином.
Где находятся входные ворота инфекции для микроорганизмов, вызывающих инфекции, ассоциированные с ППП?
Микроорганизмы, вызывающие инфекции, связанные с установкой центрального венозного катетера, могут попадать из инфузионных контейнеров, но наиболее частые места заражения — пробочки трубой, запорные краны, кожа в месте введения, боковые порты и другие инфицированные места организма. Гематогенное обсеменение катетера происходит, если организмы из других частей тела фиксируются и размножаются на внутрисосудистой части катетера или на окружающем его фиб-риновом футляре. Борьба с внутрибольничными инфекциями (инфекции мочевы-водящих путей, пневмонии) может также уменьшить число заражений, связанных с катетером.
Превентивные меры включают смешивание ППП опытным фармацевтом в вытяжке с ламинарным потоком, соблюдение схем смены контейнеров и трубок и выделение отдельного канала центральных венозных катетеров для ППП. Правильное мытье рук невозможно переоценить. Запорных кранов на линиях ППП следует избегать, а манипуляции с пробочками сводить к минимуму. Используйте асептические методы при работе с центральными линиями. Следите за наличием чистой сухой повязки над местом выхода.
Что рекомендуется при лихорадке у пациента?
Когда у пациента без лихорадки резко поднимается температура, центральный венозный катетер следует рассматривать как возможный источник инфекции. Один из методов диагностики инфекций, связанных с центральным венозным катетером, т-? взять культуру крови из места на периферии, а также культуры из внутри кожного сегмента и конца катетера. Если во всех источниках обнаруживаются одни и те же микроорганизмы, катетер рассматривают как источник инфекции. К несчастью, этот процесс требует удаления или перестановки центрального венозного катетера, чтобы получить отрезки катетера для посева. Связанные с катетером инфекции нельзя полностью исключить никаким другим образом. Если только у пациента появилась лихорадка, к катетеру следует относиться с подозрением, даже если другой источник четко идентифицируется, потому что катетер может инфицироваться вторично. Если культура крови положительна, катетер должен быть удален, поскольку велика вероятность того, что он будет вторично инфицирован.
Какой метод прекращения ППП самый безопасный?
Хотя исследования не подкрепили существование «гипогликемии отдачи у взрослых пациентов, самый безопасный метод прекращения ППП — — плавно свести на ноль скорость инфуаии в течение 2-4 ч. Если ППП резко прервано и имеется озабоченность по поводу предупреждения гипогликемии у пациента, надо ввести раствор Ю % глюкозы и определить ее концентрацию в капиллярной крови через 2 ч.
Источник
Взятие крови из катетера
В прошлой статье я обещал рассказать, как БЕЗ ШПРИЦА набирать кровь в вакуумные пробирки из венозных катетеров у пациентов. Чаще всего данные манипуляции необходимы в отделениях реанимации. В настоящее время в подавляющем большинстве медицинских организаций у лежачих пациентов с установленными венозными катетерами (центральными, периферическими), чтобы не производить лишние венопункции, венозную кровь медсёстры набирают сначала в шприц, подсоединяя его к катетеру, а затем переливают кровь в вакуумные пробирки. Это является нарушением методики взятия крови в вакуумные пробирки. В первую очередь, очень сложно избежать гемолиза, так как даже от слабого давления поршня шприца эритроциты лопаются. При этом неважно, со снятой ли крышкой наполняется вакуумная пробирка, то есть самотёком со снятой со шприца иглой, в этом случае давление поршнем всегда есть. Или же резиновую мембрану в крышке закрытой вакуумной пробирки прокалывают иглой шприца, кровь втягивается в пробирку вакуумом, поршень при этом не участвует. Но перед тем, как вынуть иглу из пробки пробирки медсестра, во избежание аэрозольного эффекта, всё-равно немного «поиграет» поршнем шприца вверх-вниз, и в этот-то момент эритроциты и лопаются. Во вторую очередь, при наполнении вакуумной пробирки со снятой крышкой, почти никогда кровь не набирается до метки на этикетке пробирки. Либо кровь ниже метки, либо выше. То есть, не соблюдается соотношение кровь/реагент. В случае с пробиркой для исследования сыворотки крови (с активатором свёртывания) небольшое отклонение от номинального объёма вакуума не так страшно. Но в случае с антикоагулянтами, крови должно быть ровно столько, сколько вакуума в пробирке, ведь реагент рассчитан именно на это количество крови. Нарушение соотношения кровь/реагент искажает результаты анализа, особенно это важно для вакуумных пробирок с раствором цитрата натрия (исследования системы гемостаза, коагулология).
Таким образом, шприц нельзя использовать при взятии крови в вакуумную пробирку. Как же тогда набирать кровь, не совершая лишнюю венопункцию? Для этого существуют луер-адаптеры (люер-адаптеры, кто как привык называть).
Луер-адаптер для взятия венозной крови
Такой адаптер вкручивается в держатель (иглодержатель, переходник, холдер):
Луер-адаптер и держатель
Держатель с вкрученным луер-адаптером присоединяется к венозному катетеру и кровь набирается как через обычную двустороннюю иглу. Правда в этом случае есть одно НО! Первая пробирка с образцом крови, разбавленным лекарственными средствами, гепарином или физраствором, должна в обязательном порядке утилизироваться. И только вторая пробирка с чистой пробой крови идёт в лабораторию на исследования. Многие скажут — это же перерасход пробирок и, соответственно денежных средств на их закупку! Но кто-то из возражающих пытался подсчитать, чем оборачиваются ситуации, когда десятки и сотни пробирок с гемолизом (набранных шприцом) просто выбраковываются лабораторией и кровь нужно брать повторно в новые вакуумные пробирки? А если в лабораторию поступают пробирки с разбавленными пробами крови? Во что в таких случаях обходится неверная постановка диагноза, неверно назначенное лечение, мучения пациентов, лишние койко-дни, если уж речь заходит и об экономической целесообразности, а не только о качестве лечения? Поэтому на качественной диагностике, с которой начинается лечение, экономить вообще не стоит, тем более в мелочах, типа луер-адаптера.
В следующей статье подробно расскажу о том, можно ли для исследований сыворотки крови (биохимия, серология) выбирать вакуумные пробирки пустые, «без добавок», «без наполнителей»? Или всё же необходимы пробирки с активатором свёртывания?
Источник
Как оказалось мы теперь должны работать по
ГОСТ Р 53079.3-2008 «Технологии лабораторные клинические. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований».
3.2. Требования к условиям и процедурам взятия
образца биологического материала
Взятие образца или пробы — это процесс изъятия или образования проб, охарактеризованный процедурой их взятия, то есть оперативными требованиями и/или инструкциями для отбора, изъятия и подготовки одной или нескольких проб из инспектируемого лота для выяснения характеристик этого лота (в лабораторной медицине инспектируемый лот — это обследуемый пациент, а образцы или пробы — это порции того или иного биологического материала).
3.2.1. Биологический материал — кровь
Большая часть клинических лабораторных исследований проводится в образцах крови: венозной, артериальной или капиллярной. Венозная кровь — лучший материал для определения гематологических, биохимических, гормональных, серологических и иммунологических показателей.
Для исследования аналитов в цельной крови, сыворотке или плазме образец крови берут чаще всего из локтевой вены.
Показания для взятия крови из пальца на клиническое исследование крови:
— при ожогах, занимающих большую площадь поверхности тела пациента;
— при наличии у пациента очень мелких вен или когда они труднодоступны;
— при выраженном ожирении пациента;
— при установленной склонности к венозному тромбозу;
— у новорожденных.
При взятии образца крови из венозного или артериального катетера, через который проводилось вливание инфузионного раствора, катетер следует предварительно промыть изотоническим солевым раствором в объеме, соответствующем объему катетера, и отбросить первые 5 мл (миллилитров) взятой из катетера крови. Недостаточное промывание катетера может привести к загрязнению образца крови препаратами, вводившимися через катетер. Из катетеров, обработанных гепарином, нельзя брать образцы крови для исследований системы свертывания крови.
3.2.3. Биологический материал — моча
В зависимости от цели исследования образцы мочи собирают либо в виде отдельных порций, либо за определенный промежуток времени. Первая утренняя порция мочи (натощак, сразу после сна) используется для общего анализа, вторая утренняя порция мочи — для количественных исследований в соотношении с выделением креатинина и для бактериологического исследования, случайная порция — для качественных или количественных клинико-химических исследований, суточная моча — для количественного определения экскреции аналитов.
Желательно использовать сосуд с широкой горловиной и крышкой, по возможности надо собирать мочу сразу в посуду, в которой она будет доставлена в лабораторию. Мочу из судна, утки, горшка брать нельзя, так как даже после прополаскивания этих сосудов может сохраняться осадок фосфатов, способствующих разложению свежей мочи. Если в лабораторию доставляется не вся собранная моча, то перед сливанием ее части необходимо тщательное взбалтывание, чтобы осадок, содержащий форменные элементы и кристаллы, не был утрачен.
При взятии утренней мочи (например, для общего анализа) собирают всю порцию утренней мочи (желательно, чтобы предыдущее мочеиспускание было не позже, чем в два часа ночи) в сухую, чистую, но не стерильную посуду, при свободном мочеиспускании. При сборе суточной мочи пациент собирает ее в течение 24 ч на обычном питьевом режиме (1,5 — 2 л (литра) в сутки). Утром в 6 — 8 ч он освобождает мочевой пузырь (эту порцию мочи выливают), а затем в течение суток собирает всю мочу в чистый сосуд с широкой горловиной и плотно закрывающейся крышкой, емкостью не менее 2 л. Последняя порция берется точно в то же время, когда накануне был начат сбор (время начала и конца сбора отмечают). Если не вся моча направляется в лабораторию, то количество суточной мочи измеряют мерным цилиндром, отливают часть в чистый сосуд, в котором ее доставляют в лабораторию, и обязательно указывают объем суточной мочи.
Если для анализа требуется собрать мочу за 10 — 12 ч, сбор обычно проводят в ночное время: перед сном больной опорожняет мочевой пузырь и отмечает время (эту порцию мочи отбрасывают), затем больной мочится через 10 — 12 ч в приготовленную посуду, эту порцию мочи доставляют для исследований в лабораторию. При невозможности удержать мочеиспускание 10 — 12 ч, больной мочится в приготовленную посуду в несколько приемов и отмечает время последнего мочеиспускания.
При необходимости сбора мочи за два или три часа, больной опорожняет мочевой пузырь (эта порция отбрасывается), отмечает время и ровно через 2 или 3 часа собирает мочу для исследования.
При проведении пробы трех сосудов (стаканов) собирают утреннюю порцию мочи следующим образом: утром натощак после пробуждения и тщательного туалета наружных половых органов больной начинает мочиться в первый сосуд, продолжает во второй и заканчивает — в третий. Преобладающей по объему должна быть вторая порция. При диагностике урологических заболеваний у женщин чаще используют пробу двух сосудов, то есть делят при мочеиспускании мочу на две части; важно, чтобы первая часть в этом случае была небольшой по объему. При проведении пробы трех сосудов у мужчин последнюю третью порцию мочи собирают после массажа предстательной железы. Все сосуды готовят предварительно, на каждом обязательно указывают номер порции.
Однако! Где-нибудь еще учат собирать среднюю порцию мочи для общего анализа? Или везде уже учат по новому?
Источник
