Биохимические анализы крови у свиней
Сергей Ушаков, кандидат ветеринарных наук, технолог ЗАО «Консул»
Биохимический и клинический анализы крови – одни из распространенных и доступных диагностических методов исследований. Кровь – это динамическая система, отражающая все изменения, происходящие в организме животного под действием физиологических и патологических факторов. В настоящее время в лабораторную диагностику внедрены автоматические и полуавтоматические методики биохимических и общих клинических методов исследования крови, снизив при этом погрешность получаемых результатов. Однако человеческий фактор в проведении анализа крови остается решающим при:
- Заборе крови
- Транспортировке и хранении образцов
- Пробоподготовке перед проведением анализа
- Выборе метода исследования
- Трактовке полученных результатов
Каждый из этих этапов имеет определенный уровень погрешности, который складывается в суммарную погрешность. Чтобы свести ее к минимуму, необходимо знать некоторые особенности при отборе и транспортировке проб крови. Во-первых, кровь необходимо отбирать в вакуумные или шприц-пробирки, не допуская вспенивания, падения капель крови на дно, она должна набираться по стенке пробирки. Во-вторых, необходимо определиться, для каких исследований будет использована кровь, нужно ли ее стабилизировать. В настоящее время на рынке присутствуют пробирки с антикоагулянтом, шариками на дне для ускорения свертываемости крови. Во многих хозяйствах антикоагулянт вводят самостоятельно (при отсутствии условий точного взвешивания или определения объема), что может приводить к чрезмерному разведению крови, либо недостаточному внесению антикоагулянта и образованию небольших сгустков – все это является одной из причин получения ложных результатов общего клинического анализа. Использование шприц-пробирок с антикоагулянтом исключает возможность ошибки при его внесении. Однако остается вероятность неравномерного смешивания крови с антикоагулянтом. Считается, что после отбора крови пробирку необходимо плавно перевернуть не менее 10 раз.
Если кровь планируется использовать для приготовления мазков и выведения лейкоформулы, желательно это сделать в течение первого часа, оптимально – сразу после отбора. Если кровь поступает в пробирку, происходит перераспределение форменных элементов и нейтрофильная группа оседает на ее стенках.
Для биохимических исследований сыворотки крови отобранный образец стабилизировать не нужно, но необходимо отделить сыворотку в течение первых 2-х часов. В противном случае можно получить ложные результаты по аминотрансферазам, лактатдегидрогеназе, щелочной фосфатазе, меди, фосфору, железу, калию и хлоридам.
Определенные требования предъявляются к доставке проб сыворотки крови. Они должны быть помещены в термобокс при температуре 4 градуса, если планируется проведение исследований через сутки, если позже 24 часов, пробы необходимо заморозить при -20 градусах.
Данные рекомендации актуальны при проведении биохимических исследований сыворотки крови на практически любой анализируемый показатель. Если пробы отбираются целенаправленно, например, для анализа количества витаминов или микро- макроэлементов, или общего белка, альбуминов, мочевины – условия отбора и транспортировки могут изменяться сугубо под эти показатели. Возникает вопрос, для чего следовать указаниям по отбору и транспортировке проб? Ответ прост – мы анализируем не абсолютные, а относительные показатели и наша задача – получить результат при одинаковых условиях. В данном случае, если мы сравниваем полученный результат с нормами, мы должны знать, при каких условиях были получены эти нормы и сделать все аналогично. Поэтому каждое диагностическое учреждение должно предоставлять рекомендации по отбору и транспортировке проб крови, которым необходимо четко следовать. В идеале эти рекомендации должны быть унифицированы и одинаковы для каждого диагностического учреждения. На практике этого не наблюдается. Каждая лаборатория использует свои методы исследования и свои нормы для интерпретации полученных результатов (табл. 1, 2, 3).
Таблица 1. Нормативные показатели в сыворотке крови взрослых свиней отдельных лабораторий Беларуси и России
Таблица 2. Нормативные показатели сыворотки крови свиноматок отдельных лабораторий Беларуси
Таблица 3. Нормативные показатели биохимического состава крови для поросят в возрасте 50 дней
Как видно из табличных данных, нормативные показатели отличаются, и иногда существенно. Эти различие допускается при использовании для определения показателя различных методов исследований, но разница между референсными величинами должна находиться в пределах погрешности метода исследований. На сегодняшний день при определении нормативных показателей отдельные лаборатории учитывают физиологическое состояние животного, его возраст, но не учитывают генетические особенности, т.е. межпородные различия, а они иногда бывают существенными (Табл. 4).
Таблица 4. Биохимические показатели крови свиней в возрасте 10-12 недель в зависимости от породы
DL – немецкий ландрас, DE – немецкий йоркшир, Pietrain – петрен, Hybrid – помесные породы.
Из этой таблицы следует, что мясные породы свиней отличаются от материнских прежде всего уровнем белкового обмена, что видно по таким показателям, как мочевина, креатинин, общий белок, альбумины, кроме того у них протекает быстрее метаболизм, требующий активного участия ферментов.
Основываясь на результатах лабораторных биохимических исследований крови животных в различных хозяйствах Республики Беларусь, в особенности в передовых, регистрируется повышенный уровень креатинина, мочевины, общего белка, альбуминов. Если полученные результаты сравнить с приведенными выше немецкими нормами, то они находятся в пределах референсных величин. Передовые хозяйства РБ активно занимаются селекционной работой, у некоторых имеется нуклеус, включающий йоркшира и ландраса, закупаются чистопородные хряки – дюрок, петрен. Назрела необходимость выведения норм именно для этих животных.
Другой вопрос состоит в том, что ни одна лаборатория при проведении биохимических исследований не учитывает проведение ветеринарных обработок, которые оказывают влияние на биохимические показатели. В каждом хозяйстве схема индивидуальна и непрерывна, включает в себя вакцинации, витаминно-минеральные обработки, подкислители, ферменты в комбикормах, антибиотикотерапию, на некоторых комплексах готовят лечебные комбикорма, в которых присутствуют постоянно антибиотик, антгельминтики и т.д. В медицинской практике известно около 4500 лекарственных средств, которые влияют на биохимические показатели крови. В таблице 5 представлены некоторые лекарственные вещества, влияющие на биохимический состав крови животных. Так, например, известно, что практически все антибиотики увеличивают уровень креатинина в крови, введение декстранов увеличивает уровень глюкозы и т.д.
Таблица 5. Влияние некоторых препаратов на биохимические показатели крови животных
В заключениях лабораторий часто проводится индивидуальный анализ по каждой пробе, что является недопустимым. Целью биохимического исследования является определение среднего значения для поголовья хозяйства. Если, например, в хозяйстве отобрали кровь от 5 свиноматок, на комплексе их, к примеру, 1800. Что нам нужно узнать – какие изменения в крови у 5 животных или рассчитать средний показатель для 1800 животных с определением критерия достоверности полученных результатов? Исходя из этого, при анализе результаты необходимо статистически обрабатывать, определяя среднее значение показателя и его ошибку. Это позволит вычислить процент поголовья животных, для которых полученный показатель будет характерен. Стоит заметить, что чем больше выборка животных, у которых отбирается кровь, тем более достоверные результаты будут получены. Считается, что для получения более-менее адекватных значений биохимического исследования крови животных, количество проб должно быть не менее 7 от каждой исследуемой физиологической группы (при условии отсутствия в них гемолиза).
Заключение
Так или иначе, каждый специалист решает сам, проводить или нет биохимический и общий клинический анализы крови в той или иной лаборатории. Ясно одно, что в современных условиях результаты биохимического исследования крови не могут адекватно отражать качество кормления и сбалансированность рациона. В этом случае более достоверными данными оценки уровня обмена веществ и интенсивности роста животного является среднесуточный прирост, уровень лактации (для свиноматок), масса поросят к отъему, сдаточный вес, выход мяса с туши, категорийность и т.д. Эти показатели определяются с учетом данных всего поголовья. Если они адекватны реализации генетического потенциала поголовья, то в проведении биохимического исследования крови нет необходимости. В противном случае пробы крови должны отбираться квалифицированно, с соблюдением правил отбора, о которых говорилось выше, и доставляться в лабораторию в кратчайшие сроки.
Литературные источники
- Ветеринарная клиническая патология/ Джексон М. – 384 с.
- Мейер, Д. Ветеринарная лабораторная медицина. Интерпритация и диагностика /Д. Мейер, Дж. Харви // Перевод с англ. – М.: Софион, 2007. – 456 с.
- Schweinekrankheiten / K. Heinritzi, H.R. Gindele, G. Reiner, U. Schnurrbusch / Verlag eugen ulmer Stutgart. – 2006. – 480 p.
- Swine Nutrition Guide: 2 nd / Y.F. Patience et all. – 2001. – 271 p.
- Wartości referencyjne podstawowych badań laboratoryjnych w weterynarii/ A. Winicrka. – Warchawa. – 1997. – 115 s.
Источник
Биохимические показатели крови свиней специализированных типов
Исследования проводились на чистопородных свиньях СТ и гибридном молодняке СТЧЛ. Общий белок сыворотки крови определяли рефрактометрически, белковые фракции — методом горизонтального электрофореза на бумаге, уровень общих липидов — по B. Swahn, I. Scand. Исследовали активность аминотрансфераз (АСТ и АЛТ) методом Рейтмана-Френкеля, щелочной фосфатазы — по методу O.A. Bessey e.a., креатинкиназы — по S.S. Kuby. Уровень кортизола определялся методом радиоиммунологического анализа, адреналина — флюориметрическим методом. Фагоцитарная активность устанавливалась по В.Ф. Матусевичу, бактерицидная активность — по методике О.В.Смирновой, Т.А. Кузьминой
Ключевые слова: кровь, свиньи, сыворотка крови, общий белок, аминотрансфераза, креатинкиназа, фагоцитарная активность
Как известно, кровь играет чрезвычайно важную роль в организме животных. Посредством крови осуществляется важнейшее свойство живой ткани — обмен веществ. Через кровь осуществляется гормональная и ферментативная регуляция, действуют защитные функции организма. Кровь во многом отражает как общее устройство организма, его конституциональные особенности, так и его физиологическое состояние и связанное с ним отправление жизненных функций (Е.В. Эйдригевич, В.В. Раевская, 1978).
Именно биохимические исследования крови заняли ведущее место в интерьерных исследованиях. В свиноводстве накоплен значительный материал по изучению морфологического состава крови в связи с уровнем и направлением продуктивности свиней. Уровень эритроцитов и гемоглобина свидетельствует об интенсивности метаболических процессов и энергии роста организма (Г.В. Максимов, 1995; В.А. Погодаев, 1996 и др.). Содержание лейкоцитов в крови, в свою очередь, служит показателем устойчивости организма к воздействию внешней среды.
свинья кровь белок фагоцитарный
Из биохимических показателей крови весьма подробно изучены белки. Именно белковый состав крови является одним из основных показателей, характеризующих уровень и направление продуктивности животных. Отмечено, что скороспелые свиньи отличаются повышенным содержанием общего белка в сыворотке крови (П.Е.Ладан, 1981; И.Н. Никитченко, 1978; Г.М.Бажов, Л.А.Бахирева, 1986; Г.В.Максимов, 1996; В.И.Степанов и др., 1997 и др.). Еще более высокая взаимосвязь установлена между количеством белковых фракций в сыворотке крови (альбуминов, б-,в-,г-) с интенсивностью роста свиней. В то же время нельзя не отметить более противоречивую картину взаимосвязей показателей белкового обмена с показателями мясности. Приведенные литературные данные свидетельствуют о том, что уровень белкового обмена в организме свиней положительно связан прежде всего с энергией роста.
В решении проблемы обеспечения населения Российской Федерации мясными продуктами по-прежнему значительная роль отводится свиноводству, как наиболее скороспелой отрасли животноводства. Однако кризисная ситуация, сложившаяся в сельском хозяйстве за последние 15 лет, привела к резкому спаду производства продукции свиноводства. Этот спад производства в свиноводстве сопровождался как сокращением численности поголовья, так и снижением продуктивности. Общее свинопоголовье снизилось почти на 50%. Высокий падеж, неудовлетворительные условия кормления и содержания, низкий уровень селекционно-племенной работы стали причиной снижения продуктивности животных. Средняя живая масса свиней, поступающих на убой, снизилась и составляет 55 кг.
В целом, сложившуюся в настоящее время ситуацию в свиноводстве можно характеризовать как критическую, требующую срочных организационных и экономических мероприятий и разработки долгосрочной программы развития свиноводства.
Таковыми задачами в области племенного свиноводства являются: совершенствование разводимых и создание высокопродуктивных генотипов свиней, испытание и апробация более эффективных сочетаний и внедрение их в товарное свиноводство, использование новых, высокоэффективных методов, позволяющих ускорить селекцию на повышение мясности и скороспелости, снижение затрат корма.
Исследования проводились в период 2007-2013 гг. на племенной ферме Федерального государственного учебного предприятия учхоз «Донское» Октябрьского района Ростовской области.
Для проведения опытов были отобраны по 20 свиноматок степного и донского мясных типов, по 2 хряка степного типа, донского типа, ландрас и пьетрен. Всего были сформированы 4 опытные группы.
Общий белок сыворотки крови определялся рефрактометрически, белковые фракции — методом горизонтального электрофореза на бумаге, уровень общих липидов — по B. Swahn, I. Scand (1952). Исследовалась активность аминотрансфераз (АСТ и АЛТ) методом Рейтмана-Френкеля (В.В. Меньшиков, 1973), щелочной фосфатазы — по методу O.A. Bessey e.a. (1946), креатинкиназы — по S.S. Kuby, H.A. Lardy (1954). Уровень кортизола определялся методом радиоиммунологического анализа (В.П. Радченков и др., 1985), адреналина — флюориметрическим методом (В.В. Меньшиков, 1969).
Фагоцитарная активность устанавливалась по В.Ф. Матусевичу (1970), бактерицидная активность — по методике О.В.Смирновой, Т.А. Кузьминой (1966).
Биохимические и морфологические показатели крови вполне объективно отражают сложные взаимосвязи организма животного с внешней средой. Выполняя многочисленные функции, кровь является наиболее информативной тканью живого организма. На ее количественный и качественный состав оказывают влияние многочисленные факторы: генотип животного, уровень кормления, условия содержания, возраст, пол, сезон года, физиологическое состояние. В своих исследованиях мы поставили задачу изучения целого ряда гематологических и морфологических показателей крови: уровня эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, общего белка и белковых фракций, ферментов переаминирования и дегидрирования крови.
В частности, морфологический состав крови позволяет достаточно точно судить о многих метаболических процессах в организме. Так, по количеству лейкоцитов можно определить уровень защитных сил в организме, поскольку эти клетки обладают способностью к фагоцитозу микроорганизмов, продуктам их распада и другим инородным частицам. Кроме этого, они выполняют антитоксическую функцию и выделяют вещества, стимулирующие регенерацию тканей. Наши исследования свидетельствуют об определенных различиях на этом уровне (табл. 1). В наших исследованиях наиболее высокими морфологическими показателями крови характеризовались гибридные животные генотипа СТЧЛ и ДМ-1ЧП. Так, превосходство свиней СТЧЛ и ДМ-1ЧП по количеству лейкоцитов в крови над чистопородными свиньями СТ составляло соответственно 1,0 (Р › 0,95) и 0,9 тыс./л (Р › 0,95), а над ДМ-1 — 1,7 (Р › 0,95) и 1,6 тыс./л (Р › 0,95). По количеству эритроцитов в крови превосходство гибридов СТЧЛ и ДМ-1ЧП над СТ было 1,1 (Р › 0,95) и 0,8 млн./л (Р › 0,95), над ДМ-1 — 0,7 и 0,5 млн./л соответственно.
И, наконец, по количеству гемоглобина превосходство гибридов над чистопородными свиньями было соответственно 5,1 (Р › 0,95) и 6,4 г/л (Р › 0,99); 4,4 (Р › 0,95) и 5,3 г/л (Р › 0,99). Различия между чистопородными подсвинками степного и донского типов были недостоверными. Тем не менее подсвинки СТ имели некоторое превосходство над ДМ-1 по количеству лейкоцитов (на 0,7 тыс./л), незначительно уступая последним по количеству эритроцитов (на 0,4 млн./л) и гемоглобина (на 0,9 г/л).
Повышенный уровень эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина в крови у гибридов обусловлен, по-видимому, эффектом гетерозиса у этих животных, отличавшихся более высоким уровнем защитных сил и окислительно-восстановительных реакций.
Важнейшей составной частью органического вещества являются белки. Белки сыворотки крови по целому ряду выполняемых физиологических функций делятся на несколько фракций. Так, альбумины имеют ярко выраженную физико-химическую активность, проявляют высокие гидрофильные свойства, участвуют в регуляции водного обмена, в поддержании осмотического давления и вязкости крови, выполняют транспортные функции. Альбумины, образуя комплексы с токсичными веществами, обезвреживают их, являются важным пластическим материалом, при необходимости используются как энергетический источник.
Белки глобулиновых фракций, в частности — и -глобулины принимают активное участие в поддержании осмотического давления крови. Кроме того,-глобулины активно проявляют защитные свойства. Наиболее сильно проявляют иммунные свойства -глобулины, т.к. они содержат антитела к возбудителям различных инфекционных болезней и являются основными носителями антител в организме.
Таблица 1 — Морфологические показатели крови свиней в 6 мес.
Группа | Лейкоциты, тыс./л | Эритроциты, млн./л | Гемоглобин, г/л |
I. СТ II. ДМ-1 III. СТЧЛ IV. ДМ-1ЧП |
|
|
|
Проведенные нами исследования позволили установить, что с медицинской точки зрения у подсвинков всех групп показатели белкового состава крови были в пределах нормы (табл. 2). По уровню общего белка в крови ведущее положение занимали подсвинки генотипа СТЧЛ (на 3,7 г/л больше ДМ-1); на 0,7 г/л им уступали свиньи СТ . Самый низкий уровень общего белка в сыворотке крови имели животные ДМ-1.
Примерно сходные тенденции наблюдались по количеству альбумина в сыворотке крови. Наибольшее его содержание зафиксировано у подсвинков генотипа СТЧЛ (на 2,8 г/л больше ДМ-1; Р › 0,95) и СТ (на 2,4 г/л больше ДМ-1; Р › 0,95). Подсвинки ДМ-1 также уступали остальным группам по этому показателю. Повышенное содержание альбуминов у свиней генотипа СТЧЛ и СТ подтверждается более высокой энергией роста этих животных на откорме. Примерно на одном уровне было содержание -глобулинов у свиней степного и донского типов, чистопородные подсвинки превосходили гибридов СТЧЛ и ДМ-1ЧП по этому показателю на 1,0 — 1,1 г/л (Р › 0,95) и 0,9 — 1,0 г/л (Р › 0,95) соответственно. По уровню — глобулинов в сыворотке крови различия были незначительными и недостоверными. Несколько выше этот показатель был у свиней СТ и ДМ-1ЧП, ниже — у ДМ-1. Наиболее высокий уровень -глобулинов отмечен у помесей генотипа СТЧЛ (на 1,4 — 1,7 г/л больше СТ и ДМ-1; Р › 0,95) и ДМ-1ЧП (на 1,1 — 1,4 г/л больше чистопородных подсвинков; Р › 0,95). Более высокий уровень -глобулинов у гибридов свидетельствует о более высоких защитных возможностях этих животных к выработке антител. В целом, животные СТЧЛ и СТ, имевшие наибольшую энергию роста, отличались и более высоким уровнем белкового обмена в крови.
Таблица 2 — Белковый состав сыворотки крови опытных свиней
Показатели белкового состава, г/л | СТ | ДМ-1 | СТЧЛ | ДМ-1ЧП |
Общий белок Альбумины
-глобулины |
|
|
|
|
По-прежнему актуальными остаются вопросы раннего прогнозирования продуктивности. В этом плане перспективными являются ферменты сыворотки крови, катализирующие различные обменные процессы в организме. Ферменты переаминирования аминотрансферазы являются одними из ключевых ферментов азотистого обмена. И аспартатаминотрансфераза (АСТ), и аланинаминотрансфераза (АЛТ) осуществляют белково-углеводный и жировой обмен, катализирует синтез основных аминокислот. Величина активности этих ферментов генетически детерминирована и тесно связана с уровнем продуктивности животных.
Еще два фермента сыворотки крови креатинкиназа (КК) и лактатдегидрогеназа (ЛДГ) тесно связаны с энергетическими процессами в мышечной ткани, очень чутко реагируют на действие различных стресс-факторов и могут использоваться в качестве индикаторов качества мяса.
Наиболее высокую активность АСТ и АЛТ имели гибридные подсвинки генотипа СТЧЛ (на 0,28; Р › 0,999 и 0,22 мкмоль/мл; Р › 0,99 больше ДМ-1). Подсвинки СТ и ДМ-1 имели примерно одинаковый уровень активности аминотрансфераз (табл. 3). Самая низкая активность АСТ и АЛТ зафиксирована у животных ДМ-1. Более высокая активность аминотрансфераз у гибридов СТЧЛ является не случайной, поскольку именно эти животные наиболее интенсивно росли, у них происходили усиленные обменные процессы, связанные с синтезом белка для наращивания мышечной ткани.
Еще более отчетливыми были генотипические различия по активности КК и ЛДГ сыворотки крови. Достоверно более высокий уровень и КК (на 18,6 мкмоль/мл больше ДМ-1; Р › 0,999) и ЛДГ (на 47,7 мкмоль/мл; Р › 0,999 выше ДМ-1) имели гибридные подсвинки СТ ЧЛ. Несколько ниже уровень активности креатинкиназы и лактатдегидрогеназы наблюдался у чистопородных свиней СТ (на 14,1 мкмоль/мл; Р › 0,99 и 42,4 мкмоль/мл; Р › 0,999 больше ДМ-1).
Таким образом, более интенсивный рост молодняка генотипа СТЧЛ и СТ обусловил и более высокий уровень активности трансаминаз, креатинкиназы, и лактатдегидрогеназы у этих свиней, поскольку эти ферменты существенно ускоряют течение обменных процессов в организме животных. Проведенные исследования подтверждают перспективность использования ферментов, прежде всего креатинкиназы и лактатдегидрогеназы, тесно связанных с процессами мышечного обмена, в качестве маркеров мясной продуктивности.
Таблица 3 — Показатели активности АСТ, АЛТ, КК и ЛДГ в сыворотке крови подопытных свиней
Группы | АСТ, мкмоль/мл | АЛТ, мкмоль/мл | КК, мкмоль/мл | ЛДГ, мкмоль/мл |
I. СТ II. ДМ-1 III. СТЧЛ IV. ДМ-1ЧП |
|
|
|
|
Таким образом, более интенсивный рост молодняка генотипа СТЧЛ и СТ обусловил и более высокий уровень активности трансаминаз, креатинкиназы, и лактатдегидрогеназы у этих свиней, поскольку эти ферменты существенно ускоряют течение обменных процессов в организме животных. Проведенные исследования подтверждают перспективность использования ферментов, прежде всего креатинкиназы и лактатдегидрогеназы, тесно связанных с процессами мышечного обмена, в качестве маркеров мясной продуктивности.
По результатам проведенных исследований были сделаны следующие выводы:
- 1. Чистопородные животные СТ и гибридный молодняк СТЧЛ отличается повышенным содержанием гемоглобина, общего белка и белковых фракций, более высокой активностью аминотрансфераз, креатинкиназы и лактатдегидрогеназы, что является свидетельством интенсивного обмена веществ у этих быстрорастущих свиней.
- 2. Помесные свиньи генотипа СТЧЛ и подсвинки ДМ-1 отличаются более высоким уровнем фагоцитарной и бактерицидной активности крови. В целом, животные всех генотипов имеют хорошо развитые механизмы клеточной и гуморальной защиты.
Список использованной литературы
- 1. Асаев Э.Р., Тагиров Х.Х. Оценка продуктивных качеств свиней крупной белой породы и ее помесей с ландрасами//Зоотехнияю. — 2007. — №5 — с. 23-24.
- 2. Лодянов В.В. Продуктивность и технологические характеристики качества мясного сырья NOR, PSE и DFD специализированных пород и типов свиней. Автореферат на соискание ученой степени к.с.-х.наук. ДонГАУ, п. Персиановский, 2005. 24с.
- 3. Козликин А.В. Анализ физико-химических свойств мяса и шпика чистопородных и помесных свиней. Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета = Polythematic online scientific journal of Kuban State Agrarian University. 2011. № 73. С. 524-533.
- 4. Тариченко А.И. Прогнозирование продуктивных качеств свиней новых мясных типов. Диссертация на соискание ученой степени доктора сельскохозяйственных наук / Персиановский, 2000.
- 5. Ганзенко Е.А. Продуктивность свиней степного и донского типов и их помесей с хряками ландрас и пьетрен. Труды Кубанского государственного аграрного университета. 2008. Т. 1. № 15. С. 108-113.
References
- 1. Asaev Je.R., Tagirov H.H. Ocenka produktivnyh kachestv svinej krupnoj beloj porody i ee pomesej s landrasami//Zootehnijaju. — 2007. — №5 — s. 23-24.
- 2. Lodjanov V.V. Produktivnost’ i tehnologicheskie harakteristiki kachestva mjasnogo syr’ja NOR, PSE i DFD specializirovannyh porod i tipov svinej. Avtoreferat na soiskanie uchenoj stepeni k.s.-h.nauk. DonGAU, p. Persianovskij, 2005. 24s.
- 3. Kozlikin A.V. Analiz fiziko-himicheskih svojstv mjasa i shpika chistoporodnyh i pomesnyh svinej. Politematicheskij setevoj jelektronnyj nauchnyj zhurnal Kubanskogo gosudarstvennogo agrarnogo universiteta = Polythematic online scientific journal of Kuban State Agrarian University. 2011. № 73. S. 524-533.
- 4. Tarichenko A.I. Prognozirovanie produktivnyh kachestv svinej novyh mjasnyh tipov. Dissertacija na soiskanie uchenoj stepeni doktora sel’skohozjajstvennyh nauk / Persianovskij, 2000.
- 5. Ganzenko E.A. Produktivnost’ svinej stepnogo i donskogo tipov i ih pomesej s hrjakami landras i p’etren. Trudy Kubanskogo gosudarstvennogo agrarnogo universiteta. 2008. T. 1. № 15. S. 108-113.
Источник
