Анализ крови на рбтл что это

РБТЛ используется для определения физиологической активности (пролиферативного потенциала) клеток на неспецифические активаторы (митогены) и специфические антигены. Принцип реакции — активация лимфоцитов под влиянием стимулов с последующей трансформацией их в бласты. В качестве активаторов чаще всего используют ФГА (фитогемагглютинин) и конканавалин А (Кон-А).

В пробирку с питательной средой №199 помещают исследуемые лимфоциты и добавляют ФГА. Инкубируют 72-96 часов при 37оС. Пробирку без добавления ФГА используют как контроль. Пробирки центрифугируют. Из осадка готовят мазки, окрашивают по Романовскому- Гимзе.

Оценка результатов. В контрольной пробирке бластных клеток нет, а в опытной должно быть 60-80% бластных клеток. Сниженное количество бластов свидетельствует о снижении пролиферативной активности лимфоцитов.

Лимфоциты Трансформация в бласты

РТМЛ — РЕАКЦИЯ ТОРМОЖЕНИЯ МИГРАЦИИ ЛЕЙКОЦИТОВ

Принцип метода.

РТМЛ является одним из методов оценки функционального состояния Т- системы иммунитета. В основе реакции лежит способность Т-лимфоцитов выделять биологически активные субстанции – лимфокины, в том числе и факторы, ингибирующие миграцию лейкоцитов. Так, в нормальных условиях лейкоциты, помещенные в питательную среду при 37оС, способны мигрировать, образуя через 18-24 часа так называемую зону миграции. Если в среду для культивирования добавить митоген (например, ФГА) или антиген, к которому сенсибилизирован организм, то лимфоциты, содержащиеся в культуре, активируются и начинают продуцировать фактор торможения миграции. При этом величина зоны миграции резко уменьшается. По степени торможения миграции лейкоцитов можно судить о лимфокинпродуцирующей способности иммунокомпетентных клеток, а, следовательно, об их функциональной активности. Есть несколько вариантов проведения реакции, один из них – капиллярный, для которого используют пятиканальные капилляры Трошанова.

Сравнивая зону миграции без митогена (контроль) с таковой в присутствии митогена (опыт), определяют индекс миграции (ИМ).

эритроциты+ лейкоциты

гранулоциты

  ……
  …..
  …..
  …..
  ……

опыт (гепаринизированная кровь пациента +питательная среда+ ФГА/ Аг)

контроль (гепаринизированная кровь +питательная среда)

  ……………………………
  ……………………………
  ………………………………
  ……………………………
  ………………………………

Оценка результатов:

ИМ— индекс миграции лейкоцитов

ИМ = S опыт/S контроль. Норма (с ФГА) — 0,2-0,8.

В норме происходит выработка фактора торможения миграции лейкоцитов. Этот процесс может быть нарушен при ИД состоянии тогда индекс приближается к 1.

При проведении РТМЛ с антигенами (лекарства, аллергены, вакцины и т.д.) ИМ равный или менее 0,7 учитывается как положительный результат, свидетельствующий о сенсибилизации организма к данному антигену. У здорового человека в этом случае ИМ =1 (±0,2).

Оценка гуморального звена иммунитета

ОПРЕДЕЛЕНИЕ УРОВНЯ ИММУНОГЛОБУЛИНОВ В СЫВОРОТКЕ КРОВИ МЕТОДОМ РАДИАЛЬНОЙ ИММУНОДИФФУЗИИ

ПО МАНЧИНИ

Иммуноглобулины классов G, A и M определяются в сыворотке пациента (сывороточные иммуноглобулины) и в секретах (секреторные иммуноглобулины).По механизму это реакция преципитации в геле. Для её проведения необходимы агар и сыворотки, содержащие антитела к иммуноглобулинам человека. Ранее моноспецифические сыворотки к иммуноглобулинам человека получали при иммунизации ими кролика.

IgG человека кролик 1 Ат к IgG человека

IgA человека кролик 2 Ат к IgA человека

IgM человека кролик 3 Ат к IgM человека

В настоящее время такие антитела получают с помощью гибридом, то есть используют моноклональные антитела.

К расплавленному теплому агару добавляют сыворотку, содержащую Ат к IgG человека, заливают на стекло ровным слоем, дают застыть, делают лунки, заливают в лунки разведения контрольной сыворотки (с известным содержанием IgG) и исследуемые сыворотки:

Разведения контрольной сыворотки:

Цельная 1/2 1/4 1/8 1/16

1 2 3 4 5 1,2,3,4,5

сыворотки пациентов

После инкубации измеряют диаметр преципитации колец контрольной сыворотки, строят график (соотношение концентрации Ig и диаметров колец), затем измеряют диаметры исследуемых сывороток и по графику определяют концентрацию иммуноглобулинов в сыворотке больного.

Аналогично определяют и другие иммуноглобулины.

Метод высоко информативен в диагностике первичных и вторичных иммунодефицитных состояниях и хронических инфекциях. Иммуноглобулины снижаются при некоторых иммунодефицитных состояниях (когда нарушается выработка иммуноглобулинов), повышаются при миеломной болезни (злокачественное разрастание одного из клонов В-лимфоцитов и, как следствие, бесконтрольная продукция иммуноглобулинов).

IgM повышается — при перинтальных инфекциях (цитомегаловирусная, токсоплазмоз, краснуха, и др. вирусные инфекции); также повышается при острых септических состояниях, инфекционном мононуклеозе, микоплазменной пневмонии, вирусных гепатитах, циррозе, ревматоидном артрите, особенно в начальном, трудном для диагностики периоде артритов, при обострении СКВ. При некоторых заболеваниях повышение уровня Ig М свидетельствует о хроническом процессе.

IgM снижается — при первичных и вторичных ИД состояниях, при гастроэнтеропатиях, ожоговой болезни, иммунодепрессивной терапии.

IgGповышается — при разных заболеваниях, его повышение часто сопутствует активности процесса. Высокие концентрации данного иммуноглобулина наблюдаются при аутоиммунных процессах, острых инфекционных состояниях в фазу вторичного иммунного ответа. Увеличение концентрации моноклональных IgG имеет место при IgG-миеломе, бессимптомной моноклональной гаммапатии (редкие случаи).

IgG снижается — при первичных и вторичных ИД, при гастроэнтеритах с потерей белка, при нефротическом синдроме, при иммунодепрессивной терапии.

IgA повышается — при перинатальных инфекциях, хронических заболеваниях печени, подострых и хронических инфекциях, аутоиммунных заболеваниях, IgA — миеломе, бессимптомной гипергаммаглобулинемиии (редкие случаи).

IgA снижается — при ИД, ожоговой болезни, селективном дефиците IgA. Лица с дефицитом IgA предрасположены к хроническим воспалительным, аутоиммунным и аллергическим заболеваниям.

В настоящее время всё более широкое распространение получают более современные методы определения уровня иммуноглобулинов: ИФА, нефелометрический, турбодиметрический.

ЦИК ПО ХАШКОВОЙ

Метод основан на способности ПЭГ (полиэтиленгликоля) преципитировать иммунные комплексы (т.е. комплексы Аг/Ат). По концентрации белка в преципитате судят о количестве ЦИК.

Норма для взрослых: 24 — 84 ед.

ЦИК — это нормальное явление для организма и уровень его повышается при любых острых воспалительных заболеваниях на непродолжительное время.

Высокий уровень ЦИК является один из показателей воспаления и тканевого повреждения. Высокий уровень ЦИК, как правило, коррелирует с активностью патологического процесса при аутоиммунных заболеваниях.

Низкий уровень ЦИК наблюдается редко, и как правило, бывает у маленьких детей и больных с низким содержанием белка в плазме крови.

Оценка фагоцитарного звена



Источник

Принцип
радиоиммунологического анализа (РИА)
основан на выявлении комплекса АГ-АТ,
в котором один из иммунореагентов был
мечен радиоактивным изотопом. Обычно
используют изотопы йода (125I или131I). Учет реакции проводят по
убыванию или по возрастанию радиоактивности
(в зависимости от методики РИА) с помощью
специальных счетчиков- или-излучения. Метод
высокочувствителен, но постепенно
вытесняется иммуноферментным анализом,
учитывая небезопасность работы с
радиоактивными изотопами и необходимость
в сложном регистрирующем оборудовании.

Однако там, где в
качестве АГ выступает низкомолекулярный
гаптен (например, лекарственные
препараты, стероидные и пептидные
гормоны и др.) РИА используется весьма
широко. Существуют его гетерогенные
варианты, аналогичные ИФА, а также
конкурентные варианты.

В последнем случае
на твердую фазу (например, полистироловые
шарики) сорбируют известные АТ в
комплексе с радиоактивно меченым АГ
(например, лекарственным препаратом)
в известной концентрации. К этому
комплексу добавляют исследуемый
материал, содержащий неизвестную
концентрацию изучаемого лекарственного
препарата-АГ. Он вытесняет из комплекса
меченый АГ пропорционально своей
концентрации. Радиоактивность
вытесненного АГ измеряют с помощью
счетчика и определяют концентрацию
неизвестного АГ.

Клеточные
методы оценки иммунитета

Реакция
бласттрансформации лимфоцитов (РБТЛ).

Переход малых
лимфоцитов в бластные формы, способные
к пролиферации и дальнейшей дифференцировке
называется бласттрансформацией и
сопровождается морфологическими
изменениями лимфоцитов. Бласты –
крупные, округлой формы клетки имеют
большое ядро, занимающее большую часть
цитоплазмы. В ядре содержится несколько
крупных базофильных ядрышек, цитоплазма
бластов зернистая. Одна бластная клетка
может дать клон из 16-32 и даже 64 клеток,
обладающих более высокой
иммунокомпетентностью, чем исходный
лимфоцит. Бласттрансформация лимфоцитов
может быть вызвана специфическими
антигенами и неспецифическими
стимуляторами (митогенами). К бактериальным
митогенам относятся полисахариды
грамотрицательных бактерий, туберкулин
микобактерий и др.

Способностью
вызывать бласттрансформацию лимфоцитов
обладают отдельные продукты животного
(иммуноглобулин, выделенный из
гетерологичной иммунной сыворотки) и
растительного (фитогемагглютинин –
ФГА) происхождения.

При постановке
РБТЛ кровь или выделенные из нее
лейкоциты вносят в среду RPMIили Игла, затем добавляют антиген или
митоген. Учет реакции после внесения
митогенов проводят через 2-4 суток, а
после стимуляции антигенами через 3-5
суток. Неспецифический митоген ФГА
трансформирует в бласты 30-50%, а ЛПС –
до 30% лимфоцитов крови человека. Под
влиянием специфических антигенов в
бласты трансформируются не более 5-10%
малых лимфоцитов.

Результаты
РБТЛ можно учитывать морфологически
– прямым подсчетом бластов на окрашенных
препаратах под микроскопом или
радиометрическим методом, измеряя
уровень включения в ДНК лимфоцитов
тимидина, меченного тритием.

Реакция
подавления миграции лейкоцитов (РПМЛ).

Сущность ее в том,
что в присутствии антигенов лимфоциты
выделяют цитокины (лимфокины), в
частности, фактор, подавляющий миграцию
нейтрофилов и макрофагов. К взвеси
лейкоцитов добавляют антиген и заполняют
ею капиллярные трубочки (контроль –
без антигена или посторонний антиген).
Эти капилляры помещают в камеры или
лунки, заполненные питательной средой.
После инкубации при 370С 18 часов
измеряют зону миграции клеток из
капилляров или подсчитывают их количество
в лунке. Если есть иммунные клетки (т.е.
организм сенсибилизирован к антигену),
то миграция лейкоцитов подавляется.

Кожные пробы и
другие провокационные тесты

Для определения
гиперчувствительности (аллергии) к
антигенам-аллергенам у людей проводят
провокационные тесты.Суть
их в том, что соответствующий аллерген
вводят в организм перорально, ингаляционно,
наносят на кожу при ее скарификации
или вводят внутрикожно. Обычно, спустя
30 минут оценивают немедленные
аллергические реакции (ПЧНТ), а через
24-48 час – замедленные (ПЧЗТ).

На пыльцевые,
пищевые, лекарственные аллергены чаще
наблюдаются немедленные кожные реакции
в виде покраснения и припухлости.
Замедленные реакции развиваются на
бактериальные антигены. Пробу Манту
ставят для выявления сенсибилизации
к микобактериям туберкулеза (оценка
вакцинации и инфицированности).
Туберкулин РРDвводят
внутрикожно и при положительной реакции
через 24-48 час в месте инъекции возникает
воспалительная реакция. Она указывает
на наличие сенсибилизации к этому
антигену. Сильная реакция, или, наоборот,
ее отсутствие (анергия) может быть при
туберкулезе.

Кожные пробы могут
использоваться для выявления
иммунодефицитов и оценки резистентности
к конкретной инфекции. Большинство
людей встречались в течение жизни с
антигенами распространенных
условно-патогенных бактерий и в норме
имеют к ним сенсибилизацию. При постановке
внутрикожных проб с аллергенами
стафилококка, стрептококка, кишечной
палочки, протея, микобактерий туберкулеза
(туберкулин) и другими, реакция должна
быть положительной хотя бы на один из
них. Отсутствие реакции может указывать
на иммунодефицит.

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]

  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #

Источник

Известны вещества, оказывающие на лимфоциты млекопитающих митогенное действие (табл. 1).

Таблица 1

Неспецифические митогены лимфоцитов

Митоген Происхождение Мишень
ФГА Phaseolus vuldaris Т-лимфоциты
Кон А Canavalia ensitormis Т-лимфоциты
Митоген лаконоса МЛ (PWM) Phytolacca americana В-лимфоциты в
при­сутствии Т-клеток
ЛПС
 
грамположительные бактерии В-лимфоциты

Чаще для оценки функционального состояния Т-лимфоцитов в клинической лабораторной практике используют фитогемагглютинин (ФГА) – растительный лек­тин, получаемый из семян фасоли. Обычно мононуклеарные лейкоциты, выделен­ные из периферической крови методом градиентного центрифугирования, культи­вируют в присутствии ФГА в течение 72 ч. Результаты реакции можно учитывать либо морфологическим методом, либо по включению радиоактивной метки.

В первом случае из клеточной культуры готовят мазки, фиксируют их в мета­ноле и окрашивают по Романовскому-Гимза, так же, как мазки крови. В световом микроскопе с иммерсионной системой определяют процент бластов по отношению к общему количеству лимфоцитов. Результат может быть выражен также в виде ин­декса стимуляции (ИС), представляющего собой отношение процента трансформи­рованных клеток в опыте (культура с ФГА) к проценту трансформированных клеток в контроле (культура без ФГА).

Учет результатов по включению радиоактивной метки более удобен. Этот ме­тод позволяет уменьшить количество крови для исследования, а также сократить расход питательных сред и трудозатраты. Культивирование проводят не в пробир­ках или флаконах, а в 96-луночных планшетах с объемом лунки около 200 мкл. В каждую лунку достаточно внести 50000 клеток, что в пересчете на цельную кровь составляет 0,05 мл. За 4-6 ч до окончания культивирования в лунки вносят зН-ти­мидин. Далее с помощью специального прибора (клеточного харвестера) клетки пе­реносят на стеклянные фильтры, избыток метки смывают большим количеством воды, фильтры высушивают и помещают во флаконы со сцинтилляционной жид­костью. Уровень включения метки оценивают на сцинтилляционном спектрофото­метре. Результаты выражают в импульсах в минуту или в виде индекса стимуляции (отношение уровня включения метки в культуре с ФГА к уровню включения метки клетками, культивировавшимися без ФГА).

На интенсивность стимуляции лимфоцитов могут влиять условия культивиро­вания, качество использованных реактивов, качество сыворотки, используемой в ка­честве добавки к питательной среде.

При оценке результатов РБТЛ следует обращать внимание, как на интенсив­ность пролиферативного ответа стимулированной культуры, так и на высоту ответа в контрольных лунках. Снижение пролиферативного ответа на ФГА свидетельст­вует о наличии иммунодефицита, однако механизмы последнего могут быть раз­личны.

Оценка интенсивности продукции цитокинов

С помощью тестов этой группы можно получить представление о продукции цитокинов мононуклеарными лейкоцитами периферической крови. Следует иметь в виду, что одни цитокины продуцируются преимущественно лимфоцитами (ИЛ-2, ИЛ-6), а другие – моноцитами (ИЛ-1, TNF); продукцию первых стимулируют Т-клеточные митогены (ФГА, Кон А), продукцию вторых – микробные липополисахариды (ЛПС).

Исследование проводят по следующей схеме. Мононуклеары периферической крови, выделенные методом градиентного центрифугирования, культивируют в 24-луночных культуральных планшетах (объем лунки около 2 мл) в течение 16-18 ч в присутствии Кон А, ФГА или ЛПС. Надосадочную жидкость собирают и опреде­ляют в ней содержание цитокина. Для определения содержания цитокинов исполь­зуют либо иммуноферментный анализ, либо цитокинзависимые клеточные линии. Принцип определения основан на том, что клеточная линия способна размножаться только в присутствии определенного цитокина. Интенсивность пролиферации кле­ток линии в присутствии разных разведений исследуемого образца сравнивают с интенсивностью пролиферации клеток той же линии в присутствии различных разведений рекомбинантного цитокина с известной активностью. Математическое сравнение полученных титровочных кривых позволяет вычислить содержание цитокина в исследуемом образце. В некоторых случаях используют не цитокинзависимую, а цитокинчувствительную клеточную линию. Клетки этой линии гибнут в присутствии цитокина. Таким образом, титровочная кривая будет отражать процент погибших клеток, которых будет тем больше, чем выше концентрация цитокина.

Определение специфических IgEобычно проводят с помощью кожных проб. Определение специфических IgE с помощью радиоаллергосорбентного теста показано при высоком риске анафилактических реакций, поражении кожи. Суть метода заключается в следующем:

1) к аллергену, сорбированному на твердой подложке, добавляют исследуемую сыворотку;

2) после отмывания несвязавшихся IgE добавляют меченые антитела к IgE;

3) по уровню радиоактивности оценивают содержание специфических IgE в исследуемой пробе.

Применяется модификация метода с использованием меченных ферментом антител к IgE.

Методы, основанные на реакции высвобождения гистамина тучными клетками.Суть методов заключается в следующем:

1) к тучным клеткам, покрытым специфическими IgE, добавляют антиген;

2) связывание антигена с IgE вызывает дегрануляцию тучных клеток и высвобождение гистамина;

3) определяют содержание гистамина в растворе.

Эти методы могут использоваться для изучения влияния лекарственных средств и других веществ на тучные клетки и базофилы при аллергических заболеваниях. Методы, основанные на реакции высвобождения гистамина тучными клетками, трудоемки и применяются редко.

Дата добавления: 2015-02-27; просмотров: 2863; Опубликованный материал нарушает авторские права? | Защита персональных данных

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Да какие ж вы математики, если запаролиться нормально не можете??? 8752 — | 7558 — или читать все…

Читайте также:

Источник